| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 1 引言 | 第12-22页 |
| 1.1 鹿种鉴别的意义 | 第12-14页 |
| 1.2 种间鉴别方法研究进展 | 第14-17页 |
| 1.2.1 形态学检测法 | 第14-15页 |
| 1.2.2 仪器分析法 | 第15-16页 |
| 1.2.3 生化鉴定技术 | 第16页 |
| 1.2.4 分子生物学检测法 | 第16-17页 |
| 1.3 多重PCR技术研究进展 | 第17-18页 |
| 1.4 GeXP多重PCR技术研究进展 | 第18-21页 |
| 1.4.1 GeXP多重PCR技术扩增原理 | 第19页 |
| 1.4.2 GeXP多重PCR技术的优势及应用 | 第19-21页 |
| 1.5 本研究目的及意义 | 第21-22页 |
| 1.5.1 研究目的 | 第21页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第21-22页 |
| 1.5.3 研究意义 | 第22页 |
| 2 材料及方法 | 第22-30页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-24页 |
| 2.1.1 参考样品 | 第22-23页 |
| 2.1.2 实际样本 | 第23-24页 |
| 2.2 主要试剂 | 第24-25页 |
| 2.3 主要仪器设备 | 第25-26页 |
| 2.4 实验方法 | 第26-30页 |
| 2.4.1 DNA提取 | 第26页 |
| 2.4.2 引物设计 | 第26-27页 |
| 2.4.3 引物特异性验证 | 第27-29页 |
| 2.4.3.1 单重PCR与琼脂糖凝胶电泳 | 第27-28页 |
| 2.4.3.2 GeXP单重PCR与GeXP片段分析验证引物特异性 | 第28-29页 |
| 2.4.4 GeXP多重PCR体系建立与优化 | 第29页 |
| 2.4.5 灵敏度试验 | 第29-30页 |
| 2.4.6 实际样品检测 | 第30页 |
| 3 结果与分析 | 第30-63页 |
| 3.1 引物设计 | 第30-32页 |
| 3.2 单重PCR验证引物特异性电泳图 | 第32-36页 |
| 3.3 GeXP单重PCR验证引物特异性 | 第36-39页 |
| 3.4 马鹿产品鉴伪的GeXP多重PCR体系 | 第39-53页 |
| 3.4.1 马鹿、驯鹿、麋鹿、黇鹿的GeXP四重PCR体系建立与优化 | 第39-45页 |
| 3.4.1.1 DNA聚合酶优化 | 第39-40页 |
| 3.4.1.2 退火温度优化 | 第40-42页 |
| 3.4.1.3 混合引物浓度配比优化 | 第42-44页 |
| 3.4.1.4 特异性交叉验证检测结果 | 第44-45页 |
| 3.4.2 马鹿、驯鹿、麋鹿、黇鹿、白唇鹿的GeXP五重PCR体系建立与优化 | 第45-49页 |
| 3.4.2.1 五重体系引物浓度优化 | 第46-47页 |
| 3.4.2.2 五重特异性交叉验证 | 第47-49页 |
| 3.4.3 灵敏度检测 | 第49-53页 |
| 3.4.3.1 多重检测体系单模板灵敏度试验结果 | 第49-52页 |
| 3.4.3.2 五重检测体系混合模板灵敏度试验结果 | 第52-53页 |
| 3.5 梅花鹿和马鹿产品的鉴伪GeXP六重PCR体系 | 第53-56页 |
| 3.5.1 GeXP六重PCR体系建立 | 第53-54页 |
| 3.5.2 六重交叉特异性验证 | 第54-56页 |
| 3.6 实际样品检测 | 第56-63页 |
| 3.6.1 DNA提取与质控验证 | 第56-60页 |
| 3.6.2 GeXP多重PCR检测鹿源性成分 | 第60-63页 |
| 4 讨论 | 第63-66页 |
| 4.1 靶序列的选择与引物设计 | 第63-64页 |
| 4.2 GeXP多重PCR体系优化 | 第64-65页 |
| 4.3 GeXP多重PCR技术应用于鹿类种间鉴定的适用性 | 第65-66页 |
| 4.4 进一步研究方向 | 第66页 |
| 5 结论 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-74页 |
| 附录 | 第74-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第82页 |
