| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 中英文缩略词 | 第17-18页 |
| 前言 | 第18-24页 |
| 第一章 制剂学研究 | 第24-48页 |
| 1 仪器与试剂 | 第24-25页 |
| 1.1 仪器 | 第24-25页 |
| 1.2 试剂 | 第25页 |
| 2 实验方法 | 第25-33页 |
| 2.1 HA-TiO_2@MWCNTs的制备 | 第25-27页 |
| 2.1.1 MWCNTs的氧化 | 第25-26页 |
| 2.1.2 TiO_2@MWCNTs的合成 | 第26页 |
| 2.1.3 HA的氨基化修饰 | 第26页 |
| 2.1.4 HA-TiO_2@MWCNTs的合成 | 第26-27页 |
| 2.2 HA-TiO_2@MWCNTs的表征 | 第27-29页 |
| 2.2.1 紫外-可见全波长扫描（UV-Vis） | 第27页 |
| 2.2.2 水分散性实验 | 第27页 |
| 2.2.3 傅立叶变换红外光谱表征（FT-IR） | 第27-28页 |
| 2.2.4 Zeta电位的考察 | 第28页 |
| 2.2.5 透射电镜和扫描电镜表征 | 第28页 |
| 2.2.6 TiO_2@MWCNTs体外光催化活性评价 | 第28页 |
| 2.2.7 TiO_2@MWCNTs在体外的产热实验 | 第28-29页 |
| 2.3 HA-TiO_2@MWCNTs负载HMME | 第29页 |
| 2.4 HMME含量测定方法的建立 | 第29-30页 |
| 2.4.1 HMME的紫外-可见光全波长扫描 | 第29页 |
| 2.4.2 HMME的荧光扫描 | 第29页 |
| 2.4.3 HMME标准曲线的建立 | 第29-30页 |
| 2.4.4 精密度实验 | 第30页 |
| 2.5 载药方法的考察 | 第30-31页 |
| 2.5.1 离心分离法测定HA-TiO_2@MWCNTs/HMME制剂中HMME的含量 | 第30页 |
| 2.5.2 载体与药物投料比的确定 | 第30-31页 |
| 2.6 HA-TiO_2@MWCNTs/HMME制剂的性质考察 | 第31-32页 |
| 2.6.1 紫外-可见光全波长扫描（UV-Vis） | 第31页 |
| 2.6.2 粒径分布以及Zeta电位的考察 | 第31-32页 |
| 2.6.3 制剂的稳定性考察 | 第32页 |
| 2.7 HA-TiO_2@MWCNTs/HMME制剂的体外释药试验 | 第32-33页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第33-47页 |
| 3.1 HA-TiO_2@MWCNTs的表征 | 第33-39页 |
| 3.1.1 紫外-可见光全波长扫描（UV-Vis） | 第33页 |
| 3.1.2 水分散性实验 | 第33-34页 |
| 3.1.3 红外光谱图分析 | 第34-35页 |
| 3.1.4 Zeta电位考察 | 第35-36页 |
| 3.1.5 透射电镜和扫描电镜表征 | 第36-37页 |
| 3.1.6 TiO_2@MWCNTs在体外的光催化活性评价 | 第37-39页 |
| 3.1.7 TiO_2@MWCNTs体外产热实验结果分析 | 第39页 |
| 3.2 HMME含量测定方法的建立 | 第39-42页 |
| 3.2.1 HMME的紫外-可见光全波长扫描以及检测波长的确定 | 第39-40页 |
| 3.2.2 HMME的荧光扫描光谱图 | 第40-41页 |
| 3.2.3 HMME标准曲线的建立 | 第41页 |
| 3.2.4 精密度结果 | 第41-42页 |
| 3.3 载药方法的考察 | 第42-43页 |
| 3.3.1 载体与药物投料比的确定 | 第42-43页 |
| 3.4 HA-TiO_2@MWCNTs/HMME制剂的性质考察 | 第43-45页 |
| 3.4.1 紫外-可见光全波长扫描（UV-Vis） | 第43-44页 |
| 3.4.2 粒径分布以及Zeta电位的考察 | 第44-45页 |
| 3.4.3 制剂的稳定性考察 | 第45页 |
| 3.5 HA-TiO_2@MWCNTs/HMME制剂的体外释药试验 | 第45-47页 |
| 4 本章小结 | 第47-48页 |
| 第二章 细胞学研究 | 第48-71页 |
| 1 仪器与试剂 | 第48-51页 |
| 1.1 仪器与设备 | 第48-49页 |
| 1.2 试剂 | 第49-50页 |
| 1.3 主要试剂的配制 | 第50-51页 |
| 2 实验方法 | 第51-58页 |
| 2.1 细胞培养 | 第51-52页 |
| 2.1.1 人乳腺癌MCF-7 细胞的复苏 | 第51页 |
| 2.1.2 人乳腺癌MCF-7 细胞的培养 | 第51-52页 |
| 2.1.3 人乳腺癌MCF-7 细胞的冻存 | 第52页 |
| 2.2 SRB法测定细胞抑制率和存活率 | 第52-53页 |
| 2.2.1 SRB法 | 第52-53页 |
| 2.2.2 载体对MCF-7 细胞的毒性实验 | 第53页 |
| 2.3 体外光疗效果的评估实验 | 第53-54页 |
| 2.3.1 808nm激光照射下的光热治疗效果 | 第53-54页 |
| 2.3.2 532nm激光照射下的光动力治疗效果 | 第54页 |
| 2.3.3 808nm和 532nm激光联合的光疗效果 | 第54页 |
| 2.4 MCF-7 细胞对载体的摄取实验 | 第54-55页 |
| 2.4.1 FITC法观察MCF-7 细胞对载体的摄取情况 | 第54-55页 |
| 2.4.2 流式细胞仪测定MCF-7 细胞对载体的摄取情况 | 第55页 |
| 2.5 MCF-7 细胞内活性氧的测定 | 第55-56页 |
| 2.6 细胞周期的阻滞实验 | 第56-57页 |
| 2.7 单细胞凝胶电泳法研究制剂对MCF-7 细胞DNA的损伤情况 | 第57-58页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第58-70页 |
| 3.1 载体对MCF-7 细胞的毒性实验 | 第58-59页 |
| 3.2 体外光疗效果的评估 | 第59-62页 |
| 3.3 MCF-7 细胞对载体的摄取实验 | 第62-64页 |
| 3.3.1 FITC法观察MCF-7 细胞对载体的摄取情况 | 第62-63页 |
| 3.3.2 流式细胞仪测定MCF-7 细胞对载体的摄取情况 | 第63-64页 |
| 3.4 细胞活性氧（ROS）的测定结果 | 第64-65页 |
| 3.5 细胞周期结果 | 第65-68页 |
| 3.6 单细胞凝胶电泳实验结果 | 第68-70页 |
| 4 本章小结 | 第70-71页 |
| 第三章 HA-TiO_2@MWCNTs/HMME纳米靶向制剂的体内活性研究 | 第71-83页 |
| 1 仪器与试剂 | 第71-72页 |
| 1.1 仪器 | 第71页 |
| 1.2 试剂 | 第71-72页 |
| 1.3 实验动物 | 第72页 |
| 2 实验方法 | 第72-74页 |
| 2.1 S180荷瘤小鼠模型的建立 | 第72页 |
| 2.2 HA-TiO_2@MWCNTs/HMME在S180荷瘤小鼠的活体成像实验 | 第72-73页 |
| 2.2.1 体内热成像 | 第72-73页 |
| 2.2.2 近红外成像 | 第73页 |
| 2.3 HA-TiO_2@MWCNTs/HMME在S180荷瘤小鼠的药效学实验 | 第73-74页 |
| 2.3.1 实验分组与操作方法 | 第73-74页 |
| 2.3.2 H&E染色观察病理变化 | 第74页 |
| 3 实验结果 | 第74-82页 |
| 3.1 HA-TiO_2@MWCNTs/HMME在S180荷瘤小鼠的活体成像结果 | 第74-77页 |
| 3.1.1 体内热成像结果及分析 | 第74-75页 |
| 3.1.2 近红外成像结果及分析 | 第75-77页 |
| 3.3 HA-TiO_2@MWCNTs/HMME在S180荷瘤小鼠的药效学研究 | 第77-82页 |
| 3.3.1 治疗期间小鼠肿瘤体积和体重的变化 | 第77-81页 |
| 3.3.2 肿瘤组织的H&E染色结果 | 第81-82页 |
| 4 本章小结 | 第82-83页 |
| 全文总结 | 第83-85页 |
| 参考文献 | 第85-91页 |
| 个人简介 | 第91-93页 |
| 致谢 | 第93页 |
