致谢 | 第4-5页 |
摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-8页 |
全文缩写表 | 第9-15页 |
前言 | 第15-18页 |
第一章 金纳米粒的合成、表征及其与基因复合物的筛选 | 第18-29页 |
1.1 仪器与试剂 | 第18-19页 |
1.1.1 仪器 | 第18页 |
1.1.2 试剂 | 第18-19页 |
1.2 实验方法 | 第19-21页 |
1.2.1 AuP的合成 | 第19页 |
1.2.2 AuPT的合成及表征 | 第19-20页 |
1.2.3 AuPT与基因复合物的制备与表征 | 第20页 |
1.2.4 TAT孵育浓度的筛选 | 第20页 |
1.2.5 B16F10转染效率评价 | 第20-21页 |
1.2.6 B16F10细胞毒性评价 | 第21页 |
1.2.7 数据统计 | 第21页 |
1.3 实验结果与讨论 | 第21-28页 |
1.3.1 AuPT与AuPT/pDNA的形态 | 第21-22页 |
1.3.2 PEI与TAT定量分析 | 第22-23页 |
1.3.3 载体的粒径与电位 | 第23-24页 |
1.3.4 细胞穿膜肽TAT浓度筛选 | 第24页 |
1.3.5 不同比例AuPT/pDNA复合物的粒径 | 第24-25页 |
1.3.6 凝胶阻滞电泳 | 第25-26页 |
1.3.7 不同比例AuPT/pDNA复合物的转染效果 | 第26-27页 |
1.3.8 细胞毒性检测 | 第27-28页 |
1.4 本章小结 | 第28-29页 |
第二章 经修饰金纳米粒体外药效学及其透皮效率的评价 | 第29-50页 |
2.1 仪器与试剂 | 第29-30页 |
2.1.1 仪器 | 第29-30页 |
2.1.2 试剂 | 第30页 |
2.1.3 实验动物 | 第30页 |
2.2 实验方法 | 第30-38页 |
2.2.1 PDNA摄取实验 | 第30-31页 |
2.2.2 入胞机制评价 | 第31页 |
2.2.3 Mi221的基因调控效率 | 第31-36页 |
2.2.3.1 总microRNA的提取 | 第32页 |
2.2.3.2 总mRNA提取 | 第32-33页 |
2.2.3.3 MicroRNA-221的荧光定量PCR检测 | 第33-34页 |
2.2.3.4 P27与c-Kit的荧光定量PCR检测 | 第34-36页 |
2.2.4 细胞周期评价 | 第36页 |
2.2.5 体外抗肿瘤效果评价 | 第36-37页 |
2.2.6 细胞迁移能力考察 | 第37页 |
2.2.7 体外经皮渗透实验 | 第37-38页 |
2.2.8 数据统计 | 第38页 |
2.3 实验结果与讨论 | 第38-49页 |
2.3.1 PDNA摄取结果 | 第38-40页 |
2.3.2 PDNA摄取机制 | 第40-41页 |
2.3.3 基因调控效果 | 第41-42页 |
2.3.4 体外抗肿瘤效果 | 第42-44页 |
2.3.5 B16F10细胞体外迁移能力的考察 | 第44-46页 |
2.3.6 体外经皮渗透实验结果 | 第46-49页 |
2.4 本章小结 | 第49-50页 |
第三章 经修饰金纳米粒携载Mi221经皮治疗黑色素瘤的体内评价 | 第50-61页 |
3.1 仪器与试剂 | 第50-51页 |
3.1.1 仪器 | 第50页 |
3.1.2 试剂 | 第50-51页 |
3.1.3 实验动物 | 第51页 |
3.2 实验方法与步骤 | 第51-54页 |
3.2.1 经皮基因治疗皮肤黑色素瘤的体内抑瘤效率评价 | 第51-52页 |
3.2.2 体内基因调控的评价 | 第52页 |
3.2.3 AuPT的体内分布 | 第52页 |
3.2.4 H&E染色 | 第52-53页 |
3.2.5 肿瘤组织内部细胞凋亡与周期的考察 | 第53-54页 |
3.2.6 数据统计 | 第54页 |
3.3 结果与讨论 | 第54-60页 |
3.3.1 体内抗肿瘤活性研究 | 第54-55页 |
3.3.2 体内基因调控结果 | 第55-57页 |
3.3.3 肿瘤内部载体分布 | 第57页 |
3.3.4 抗肿瘤机制考察 | 第57-60页 |
3.4 本章小结 | 第60-61页 |
全文总结 | 第61-63页 |
参考文献 | 第63-73页 |
综述 | 第73-99页 |
参考文献 | 第87-99页 |
作者简介 | 第99页 |
发表文章 | 第99-100页 |
参加学术会议 | 第100页 |