摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-9页 |
引言 | 第9-10页 |
1 文献综述 | 第10-21页 |
·Wap65 分子结构及组织分布 | 第11-14页 |
·分子结构 | 第11-13页 |
·组织分布 | 第13-14页 |
·Wap65s 表达与环境温度的相关性 | 第14-15页 |
·Wap65s 表达与环境盐度的相关性 | 第15页 |
·Wap65s 表达与病原感染的相关性 | 第15-18页 |
·Wap65s 表达与细菌感染的相关性 | 第16-17页 |
·Wap65-2 蛋白表达与寄生虫吸附间的相关性 | 第17-18页 |
·Wap65s 表达与重金属胁迫的相关性 | 第18-19页 |
·小结 | 第19-21页 |
2 鮸鱼Wap65-2 基因序列分析 | 第21-38页 |
·材料与方法 | 第21-28页 |
·实验材料 | 第21页 |
·实验试剂 | 第21-22页 |
·实验方法 | 第22-28页 |
·哈维氏弧菌感染后鮸鱼肝Wap65-2 基因mRNA 表达变化 | 第28-31页 |
·哈维氏弧菌菌悬液制备 | 第29页 |
·细菌感染并取样 | 第29-30页 |
·实时荧光定量PCR | 第30-31页 |
·结果与分析 | 第31-35页 |
·总 RNA 抽提和cDNA 文库构建 | 第31页 |
·Wap65-2 基因cDNA 序列 | 第31-32页 |
·Wap65-2 基因的氨基酸及系统进化分析 | 第32-34页 |
·哈维氏弧菌感染后鮸鱼肝Wap65-2 基因的mRNA 表达差异 | 第34-35页 |
·讨论 | 第35-38页 |
3 鮸鱼Wap65-2 的表达及抗血清制备 | 第38-50页 |
·外源基因的原核表达载体构建 | 第38-41页 |
·获得含有目的基因的克隆 | 第38-39页 |
·E.Z.N.A.Plasmid Mini Kit I 试剂盒(OMEGA)法纯化质粒 | 第39页 |
·对纯化的质粒以及原核表达载体进行双酶切 | 第39-40页 |
·切胶纯化 | 第40页 |
·连接 | 第40页 |
·转化 | 第40-41页 |
·外源基因的原核表达 | 第41-42页 |
·纯化目的质粒 | 第41页 |
·转化 | 第41页 |
·诱导 | 第41页 |
·检测 | 第41-42页 |
·染色与脱色 | 第42页 |
·抗血清的制备 | 第42-43页 |
·纯化目的蛋白 | 第42-43页 |
·制备抗血清 | 第43页 |
·Western blot | 第43-45页 |
·实验结果 | 第45-48页 |
·Wap65-2 基因载体构建及酶切鉴定 | 第45-46页 |
·原核表达载体的构建及酶切鉴定 | 第46-47页 |
·鮸鱼Wap65-2 基因的原核表达及抗血清检测 | 第47-48页 |
·讨论 | 第48-50页 |
4 结论 | 第50-52页 |
·研究成果 | 第50页 |
·克隆了鮸鱼Wap65-2 基因 | 第50页 |
·Wap65-2 原核表达并制备抗血清 | 第50页 |
·展望 | 第50-52页 |
参考文献 | 第52-59页 |
在学研究成果 | 第59-61页 |
致谢 | 第61页 |