| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 第一章 前言 | 第11-25页 |
| 1 赤潮的成因及发生过程 | 第11-14页 |
| ·赤潮形成的原因 | 第11-12页 |
| ·赤潮的发生过程 | 第12-13页 |
| ·赤潮生消与微生物的关系 | 第13-14页 |
| 2 赤潮的生物防治 | 第14-21页 |
| ·海洋抑藻微生物的多样性 | 第15-18页 |
| ·利用病毒抑制微藻的生长 | 第15-16页 |
| ·利用真菌抑制微藻的生长 | 第16-17页 |
| ·利用细菌抑制微藻的生长 | 第17页 |
| ·利用放线菌抑制微藻的生长 | 第17-18页 |
| ·海洋微生物抑藻方式及其作用机理 | 第18-19页 |
| ·直接溶藻 | 第18-19页 |
| ·间接溶藻 | 第19页 |
| ·海洋溶藻菌抑藻物质的种类 | 第19-21页 |
| ·蛋白质 | 第19-20页 |
| ·抗生素 | 第20页 |
| ·多肽 | 第20页 |
| ·氨基酸 | 第20-21页 |
| ·含氮类化合物 | 第21页 |
| ·其它抑藻物质 | 第21页 |
| 3 海洋细菌的抑藻与群体感应现象 | 第21-24页 |
| 4 本文研究的目的和意义 | 第24-25页 |
| 第二章 海洋抑藻细菌 PD-2 培养条件的优化及 AHLs 产生特性研究 | 第25-37页 |
| 1 前言 | 第25-26页 |
| 2 实验部分 | 第26-31页 |
| ·实验材料及仪器试剂 | 第26-28页 |
| ·实验材料与培养条件 | 第26页 |
| ·实验药品及试剂 | 第26-27页 |
| ·实验仪器 | 第27页 |
| ·培养基及溶液配制 | 第27-28页 |
| ·实验方法 | 第28-31页 |
| ·细菌 PD-2 培养条件优化 | 第28-29页 |
| ·细菌 PD-2 代谢产物的提取 | 第29页 |
| ·不同培养条件下抑藻活性检测 | 第29-30页 |
| ·不同培养条件下 AHLs 含量大小定性检测 | 第30页 |
| ·AHLs 信号分子产生量与细菌密度生长关系 | 第30页 |
| ·利用 TLC 生物自显影方法研究细菌 PD-2 中 AHLs 的种类 | 第30-31页 |
| 3 实验结果 | 第31-36页 |
| ·不同培养条件抑藻细菌 PD-2 的生长特性 | 第31-32页 |
| ·不同生长条件对抑藻活性的影响 | 第32-33页 |
| ·不同生长条件下对 AHLs 产生的影响 | 第33-34页 |
| ·AHLs 信号分子产生量与细菌密度生长关系 | 第34-35页 |
| ·基于 TLC 生物自显影方法研究细菌 PD-2 中 AHLs 的种类 | 第35-36页 |
| 4 本章小结 | 第36-37页 |
| 第三章 海洋微藻共栖细菌抑藻化合物的分离纯化及结构解析 | 第37-53页 |
| 1 前言 | 第37-38页 |
| 2 实验部分 | 第38-43页 |
| ·实验材料及仪器试剂 | 第38-39页 |
| ·实验材料与培养条件 | 第38页 |
| ·实验药品及试剂 | 第38页 |
| ·实验仪器 | 第38-39页 |
| ·实验方法 | 第39-43页 |
| ·菌株培养和发酵 | 第39页 |
| ·细菌代谢产物的提取 | 第39-40页 |
| ·细菌抑藻活性代谢产物的分离纯化及活性检测 | 第40-41页 |
| ·抑藻化合物分子量的测定 | 第41-42页 |
| ·NMR 测定 | 第42页 |
| ·抑藻化合物的抑藻作用方式 | 第42-43页 |
| 3 实验结果 | 第43-52页 |
| ·细菌 PD-2 代谢产物中抑藻化合物的分离纯化 | 第43-48页 |
| ·TLC 分离纯化抗菌化合物 | 第43页 |
| ·抑藻活性的初步检测 | 第43-44页 |
| ·3 号样品分离纯化抑藻化合物 | 第44-48页 |
| ·细菌 PD-2 代谢产物中抑藻化合物分子量的测定 | 第48-49页 |
| ·NMR 解析抑藻化合物的结构 | 第49-50页 |
| ·抑藻化合物的抑藻作用方式 | 第50-52页 |
| 4 本章小结 | 第52-53页 |
| 第四章 抑藻细菌 PD-2 中 luxI/R 同源基因敲除方法的建立 | 第53-77页 |
| 1 抑藻细菌 PD-2 中 luxI/R 同源基因序列的探明 | 第53-63页 |
| ·前言 | 第53页 |
| ·实验部分 | 第53-55页 |
| ·实验材料及试剂 | 第53-54页 |
| ·实验方法 | 第54-55页 |
| ·实验结果与讨论 | 第55-61页 |
| ·细菌 PD-2 中 luxI/R 同源基因序列的分析 | 第55-58页 |
| ·luxI/R 同源基因克隆 | 第58-61页 |
| ·小结 | 第61-63页 |
| 2 PD-2 与 E.coli S17-1 pSRK Gm 结合能力研究 | 第63-71页 |
| ·前言 | 第63页 |
| ·实验部分 | 第63-66页 |
| ·实验材料及实验仪器 | 第63-64页 |
| ·实验方法 | 第64-66页 |
| ·实验结果 | 第66-70页 |
| ·细菌 PD-2 利福平突变株的筛选 | 第66页 |
| ·细菌 PD-2-Rif-R-001 与 E.coli S17-1 pSRK Gm 结合实验 | 第66-67页 |
| ·结合菌株中 pSRK Gm 质粒的确认 | 第67-69页 |
| ·细菌 PD-2 与 E.coli S17-1 pSRK Gm 结合培养条件优化 | 第69-70页 |
| ·小结 | 第70-71页 |
| 3 zlb I 上下游基因片段的融合及自杀质粒重组子的构建 | 第71-77页 |
| ·前言 | 第71页 |
| ·实验部分 | 第71-74页 |
| ·实验材料及实验仪器 | 第71页 |
| ·实验方法 | 第71-74页 |
| ·实验结果 | 第74-76页 |
| ·zlb I 上下游基因的克隆与连接 | 第74-76页 |
| ·E.coli S17-1 pNPTS 138 Kan 重组转化子的构建 | 第76页 |
| ·小结 | 第76-77页 |
| 第五章 结论 | 第77-79页 |
| 参考文献 | 第79-90页 |
| 在读期间发表论文 | 第90-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 附录 | 第92-93页 |
