| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 目录 | 第8-10页 |
| 1 文献综述 | 第10-19页 |
| ·斑马鱼概述 | 第10-14页 |
| ·斑马鱼成为模式动物的发展历史 | 第10页 |
| ·斑马鱼作为模式生物的特点和优点 | 第10-11页 |
| ·斑马鱼早期胚胎发育概述 | 第11-14页 |
| ·HO-1基因的研究进展 | 第14-16页 |
| ·HO-1基因的生物学性质 | 第14页 |
| ·HO-1的表达调控机制 | 第14-15页 |
| ·HO-1基因的作用 | 第15-16页 |
| ·低氧对鱼类的危害以及鱼类的应答机制 | 第16-17页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第17-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-31页 |
| ·实验材料 | 第19-20页 |
| ·主要仪器设备 | 第20页 |
| ·试剂盒和主要试剂 | 第20-22页 |
| ·试剂盒 | 第20-21页 |
| ·主要试剂 | 第21页 |
| ·载体和菌株 | 第21-22页 |
| ·实验方法 | 第22-31页 |
| ·各时期胚胎以及各种组织总RNA的提取 | 第22-23页 |
| ·各时期胚胎以及各种组织总RNA的反转录 | 第23页 |
| ·RT-PCR时空表达分析 | 第23页 |
| ·DH5α感受态细胞的制备 | 第23-24页 |
| ·目的DNA片段与pMD18-T载体连接 | 第24页 |
| ·连接产物转化 | 第24页 |
| ·Real-Time PCR | 第24-25页 |
| ·探针标记 | 第25-26页 |
| ·原位杂交的试剂配制 | 第26-27页 |
| ·整胎原位杂交 | 第27-28页 |
| ·蛋白的提取 | 第28页 |
| ·Western Blot | 第28-29页 |
| ·体外转录合成mRNA | 第29页 |
| ·设计合成反义吗啉环寡聚核苷酸(Morpholino,MO) | 第29-30页 |
| ·显微注射 | 第30页 |
| ·低氧诱导 | 第30-31页 |
| 3 实验结果与分析 | 第31-48页 |
| ·斑马鱼HO-1基因序列分析 | 第31-32页 |
| ·斑马鱼HO-1基因在胚胎发育过程中的时空表达模式 | 第32-36页 |
| ·斑马鱼HO-1基因的时间表达谱 | 第32-33页 |
| ·斑马鱼HO-1基因的空间表达谱 | 第33-35页 |
| ·斑马鱼HO-1基因组织表达分析 | 第35-36页 |
| ·HO-1基因对斑马鱼早期胚胎发育的影响 | 第36-41页 |
| ·HO-1基因超表达对斑马鱼早期胚胎发育的影响 | 第36-38页 |
| ·HO-1基因敲降对斑马鱼胚胎发育的影响 | 第38-40页 |
| ·HO-1基因敲降对胚胎畸形率和死亡率的影响 | 第40-41页 |
| ·HO-1基因对斑马鱼胚胎低氧适应能力的影响 | 第41-48页 |
| ·低氧对斑马鱼胚胎发育的影响 | 第41-44页 |
| ·HO-1基因敲降对斑马鱼胚胎低氧适应能力的影响 | 第44-47页 |
| ·低氧条件下HO-1基因敲降对胚胎畸形率和死亡率的影响 | 第47-48页 |
| 4. 讨论 | 第48-50页 |
| ·斑马鱼HO-1基因序列分析及表达模式分析 | 第48页 |
| ·HO-1基因对斑马鱼早期胚胎发育的影响 | 第48-49页 |
| ·HO-1基因对斑马鱼胚胎低氧适应能力的影响 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
