| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 1 前言 | 第11-22页 |
| ·常用的分子标记技术类型及其研究进展 | 第11-16页 |
| ·分子标记概述 | 第11页 |
| ·常用的分子标记种类及研究进展 | 第11-14页 |
| ·分子标记技术在蜡梅研究中的应用 | 第14-16页 |
| ·作图群体的构建研究分析 | 第16-17页 |
| ·SNP分子标记的开发及其研究进展 | 第17-19页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第19-22页 |
| 2 SSR分子标记的开发及对杂交F_1代群体分离方式的评价 | 第22-39页 |
| ·实验材料 | 第22页 |
| ·主要仪器设备及试剂配制 | 第22-24页 |
| ·主要仪器设备 | 第22-23页 |
| ·主要试剂及溶液配制 | 第23-24页 |
| ·实验方法 | 第24-28页 |
| ·F_1杂交群体的构建 | 第24页 |
| ·基因组DNA提取以及质量检测 | 第24-26页 |
| ·不同研磨方法提取基因组DNA | 第24-25页 |
| ·DNA的质量检测 | 第25-26页 |
| ·SSR技术以及引物筛选 | 第26-27页 |
| ·微卫星(SSR)PCR反应体系的优化 | 第26页 |
| ·微卫星(SSR)引物筛选 | 第26-27页 |
| ·非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第27页 |
| ·非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳数据的收集记录及处理方法 | 第27-28页 |
| ·结果与分析 | 第28-37页 |
| ·蜡梅杂交F_1群体的构建 | 第28页 |
| ·SSR引物的来源 | 第28页 |
| ·SSR标记的初步筛选 | 第28-29页 |
| ·优化的SSR-PCR反应体系 | 第29-30页 |
| ·不同研磨方法获得的模板DNA的扩增效果对比 | 第30-31页 |
| ·不同上样量对非变性凝胶电泳效果的影响 | 第31页 |
| ·SSR反应体系中引物退火温度的筛选 | 第31-32页 |
| ·筛选出的多态性引物序列信息 | 第32-33页 |
| ·共显性标记在杂合位点上的分离 | 第33-35页 |
| ·统计分析 | 第35-37页 |
| ·讨论 | 第37-39页 |
| ·非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳检测 | 第37页 |
| ·共显性标记在F_1代群体中的分离 | 第37-38页 |
| ·群体分离方式评价中引物的选择和多态性 | 第38页 |
| ·偏孟德尔遗传分离和异常分离的分析 | 第38-39页 |
| 3 SNP标记的开发以及对12个蜡梅材料的分析 | 第39-52页 |
| ·前言 | 第39-40页 |
| ·实验材料 | 第40-41页 |
| ·主要的一些设备和仪器 | 第41页 |
| ·实验方法 | 第41-42页 |
| ·DNA的提取及检测 | 第41页 |
| ·基于SNP标记的CAPS标记转化 | 第41-42页 |
| ·分析转化工具 | 第41页 |
| ·CAPS转化步骤 | 第41-42页 |
| ·CAPS的扩增体系和PCR产物的酶切体系 | 第42页 |
| ·CAPS标记结果的基因分型统计与分析方法 | 第42页 |
| ·结果与分析 | 第42-49页 |
| ·DNA的提取及检测 | 第42-43页 |
| ·蜡梅SNP位点的筛选 | 第43页 |
| ·转化后的CAPS标记结果 | 第43-47页 |
| ·筛选出的CAPS标记引物以及相对应的限制性内切酶 | 第43-44页 |
| ·CAPS标记扩增结果以及酶切结果 | 第44-47页 |
| ·CAPS标记的基因分型结果 | 第47-48页 |
| ·利用CAPS分型结果对蜡梅材料进行聚类分析 | 第48-49页 |
| ·讨论 | 第49-52页 |
| ·影响CAPS标记引物开发的分析 | 第49-50页 |
| ·CAPS标记开发局限性分析 | 第50-51页 |
| ·SNP标记种属间通用性分析 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 致谢 | 第59页 |
