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基于体外细胞模型筛选评价天然产物活性成分的研究

中文摘要第1-5页
Abstract第5-10页
第一章 体外细胞模型评价天然产物活性研究进展第10-21页
 1. 用于评价抗氧化活性的细胞模型第11-14页
   ·细胞氧化损伤方法第11页
   ·抗氧化活性评价检测指标第11-12页
   ·细胞模型第12-14页
 2. 用于评价降血糖活性的细胞模型第14-16页
   ·细胞胰岛素抵抗处理方法第14页
   ·降血糖活性评价检测指标第14-15页
   ·细胞模型第15-16页
 3. 用于评价抗肿瘤活性的细胞模型第16-18页
   ·抗肿瘤活性评价检测指标第16-17页
   ·细胞模型第17-18页
 4. 用于评价被机体吸收利用程度的细胞模型第18页
 5. 用于评价其它活性的细胞模型第18-19页
 6. 小结第19-21页
第二章 油橄榄叶提取物降血糖活性评价筛选研究第21-28页
 1. 仪器,材料与试剂第21-22页
   ·仪器第21页
   ·试剂第21-22页
   ·材料第22页
 2. 实验方法第22-25页
   ·溶液的配制第22-23页
   ·HepG2细胞的复苏与培养第23页
   ·HepG2胰岛素抵抗细胞模型的建立第23-24页
   ·二甲双胍及各提取物浓度的选择第24页
   ·油橄榄叶提取物对胰岛素抵抗HepG2细胞葡萄糖消耗的影响第24-25页
   ·葡萄糖消耗量的计算第25页
   ·统计分析第25页
 3. 结果与分析第25-27页
   ·二甲双胍、部位D、E对胰岛素抵抗HepG2细胞葡萄糖消耗的影响第25-26页
   ·油橄榄叶提取物对胰岛素抵抗HepG2细胞的影响第26-27页
 4. 讨论第27-28页
第三章 C8氨基异紫堇碱抗肿瘤活性研究第28-35页
 1. 仪器,材料与试剂第29页
   ·仪器第29页
   ·试剂第29页
   ·材料第29页
 2. 实验方法第29-32页
   ·溶液的配制第29-30页
   ·肿瘤细胞的培养第30页
   ·MTT法测定C8氨基异紫堇碱抗肿瘤活性第30-31页
   ·对MGC80-3细胞周期的影响第31-32页
   ·统计分析第32页
 3. 结果与分析第32-34页
   ·对6种肿瘤细胞生长抑制作用第32-33页
   ·对MGC80-3细胞周期的影响第33-34页
 4. 讨论第34-35页
第四章 细胞代谢组学进行抗氧化活性评价的方法学研究第35-45页
 1. 仪器,材料与试剂第35-36页
   ·仪器第35-36页
   ·试剂第36页
   ·材料第36页
 2. 实验方法第36-39页
   ·溶液的配制第36-37页
   ·PC12细胞的复苏与培养第37页
   ·H_2O_2诱导PC12细胞氧化损伤模型的建立第37页
   ·细胞代谢物的提取第37-38页
   ·高效液相色谱分析波长的选择第38-39页
   ·H_2O_2诱导PC12细胞氧化损伤代谢物的色谱分析第39页
   ·统计分析第39页
 3. 结果与分析第39-44页
   ·细胞高速剪切时间的选择第39-41页
   ·高效液相色谱分析波长的选择第41-42页
   ·偏最小二乘判别模式识别分析第42-44页
 4. 讨论第44-45页
第五章 油橄榄叶清除自由基活性部位筛选第45-54页
 1. 仪器,材料与试剂第45-46页
   ·仪器第45页
   ·试剂第45页
   ·材料第45-46页
 2. 实验方法第46-48页
   ·溶液的制备第46页
   ·最佳测定波长及反应时间的选择第46-47页
   ·半数清除浓度(IC_(50))的计算第47页
   ·最佳活性部位高效液相色谱分析条件第47-48页
   ·统计分析第48页
 3. 结果与分析第48-53页
   ·最佳波长选择第48页
   ·清除DPPH·实验和清除ABTS~+·实验反应时间的扫描第48-49页
   ·油橄榄叶各提取物清除DPPH·活性及清除ABTS~+·活性的测定结果第49-52页
   ·油橄榄叶提取部位C的物质基础第52-53页
 4. 讨论第53-54页
参考文献第54-59页
研究生阶段的研究成果第59-60页
致谢第60页

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