摘要 | 第1-4页 |
ABSTRACT | 第4-10页 |
第一章 引言 | 第10-22页 |
1 新疆一枝蒿简介 | 第10-13页 |
2 新疆一枝蒿研究状况 | 第13-15页 |
·新疆一枝蒿化学成分研究 | 第13-14页 |
·药理药效研究 | 第14-15页 |
·其他研究 | 第15页 |
3 天然产物中黄酮类化合物研究概况 | 第15-18页 |
·提取分离与鉴定方法 | 第16页 |
·黄酮类化合物生物活性研究 | 第16-18页 |
4 天然产物中多糖类化合物研究概况 | 第18-20页 |
·提取分离与鉴定方法 | 第18页 |
·多糖类化合物生物活性研究 | 第18-20页 |
5 本研究立体依据及意义 | 第20-22页 |
第二章 提取物的制备及药物活性研究 | 第22-61页 |
第一节 新疆一枝蒿总黄酮提取工艺研究及含量测定 | 第22-33页 |
1 仪器、材料与试剂 | 第22-23页 |
2 制备过程 | 第23-31页 |
·实验方法 | 第23页 |
·新疆一枝蒿总黄酮提取及含量测定 | 第23-25页 |
·最大吸收波长的确定 | 第23-24页 |
·标准曲线的绘制 | 第24页 |
·含量测定 | 第24-25页 |
·超声辅助提取结果及分析 | 第25-27页 |
·单因素实验结果 | 第25页 |
·正交实验结果 | 第25-26页 |
·最佳工艺验证实验 | 第26-27页 |
·微波辅助提取结果及分析 | 第27-29页 |
·单因素实验结果 | 第27页 |
·正交实验结果 | 第27-29页 |
·最佳工艺验证实验 | 第29页 |
·SPE-HPLC 测定新疆一枝蒿黄酮提取物中槲皮素的含量 | 第29-30页 |
·色谱条件 | 第29页 |
·槲皮素对照品溶液的制备 | 第29页 |
·新疆一枝蒿总黄酮待测溶液的制备 | 第29-30页 |
·HPLC 结果及分析 | 第30-31页 |
·标准曲线的绘制 | 第30页 |
·样品测定 | 第30-31页 |
·精密度实验 | 第31页 |
·稳定性实验 | 第31页 |
·加标回收率实验 | 第31页 |
3 结论 | 第31-33页 |
第二节 新疆一枝蒿多糖提取工艺研究及含量测定 | 第33-41页 |
1 材料、试剂与仪器 | 第33页 |
2 制备过程 | 第33-36页 |
·实验方法 | 第33-34页 |
·所需溶液的制备 | 第34-35页 |
·标准曲线的绘制 | 第35页 |
·葡萄糖标准曲线的绘制 | 第35页 |
·蛋白质标准曲线的绘制 | 第35页 |
·含量测定 | 第35-36页 |
·多糖含量测定 | 第35-36页 |
·蛋白质含量的测定 | 第36页 |
3 结果与分析 | 第36-40页 |
·微波辅助提取多糖 | 第36-38页 |
·单因素实验结果 | 第36-37页 |
·正交实验结果 | 第37-38页 |
·最佳工艺验证实验 | 第38页 |
·脱蛋白实验 | 第38-40页 |
·Sevag 法脱蛋白 | 第38-39页 |
·冻融法脱蛋白 | 第39-40页 |
·两种方法脱蛋白作用的比较 | 第40页 |
4 结论 | 第40-41页 |
第三节 新疆一枝蒿提取物抗氧化活性研究 | 第41-49页 |
1 仪器、材料与试剂 | 第42页 |
2 实验方法 | 第42-45页 |
·所需溶液的制备 | 第42-43页 |
·新疆一枝蒿提取物清除羟基自由基(·OH)的测定 | 第43页 |
·新疆一枝蒿提取物清除超氧阴离子自由基(·O_2)的测定 | 第43-44页 |
·新疆一枝蒿提取物对脂质体系的抗氧化能力测定 | 第44-45页 |
·油脂过氧化值的测定 | 第44-45页 |
·卵黄脂蛋白不饱和脂肪酸过氧体系抗氧化活性测试 | 第45页 |
3 结果与分析 | 第45-48页 |
·新疆一枝蒿提取物清除羟基自由基(·OH) | 第45-46页 |
·新疆一枝蒿提取物清除超氧阴离子自由基(·O_2) | 第46页 |
·新疆一枝蒿提取物对脂质体系的抗氧化能力测定 | 第46-48页 |
·油脂过氧化值的测定 | 第46-47页 |
·卵黄脂蛋白不饱和脂肪酸过氧体系抗氧化活性测试 | 第47-48页 |
4 结论 | 第48-49页 |
第四节 新疆一枝蒿提取物抗亚硝化性能研究 | 第49-54页 |
仪器、材料与试剂 | 第50页 |
2 实验方法 | 第50-52页 |
·所需溶液的制备 | 第50-51页 |
·新疆一枝蒿提取物清除亚硝酸钠的测定 | 第51页 |
·新疆一枝蒿提取物对亚硝胺合成阻断率的测定 | 第51-52页 |
3 结果与分析 | 第52-54页 |
·新疆一枝蒿黄酮提取物对亚硝酸钠的清除率 | 第52页 |
·新疆一枝蒿黄酮提取物对亚硝胺合成阻断率 | 第52-53页 |
·新疆一枝蒿多糖提取物对亚硝酸钠的清除率 | 第53页 |
·新疆一枝蒿多糖提取物对亚硝胺合成阻断率 | 第53-54页 |
4 结论 | 第54页 |
第五节 新疆一枝蒿提取物抑菌作用研究 | 第54-61页 |
1 仪器、材料与试剂 | 第55页 |
2 实验方法 | 第55-57页 |
·试剂及菌种的准备 | 第55-57页 |
·培养基及无菌滤纸片 | 第55-56页 |
·倒板 | 第56页 |
·菌悬液的制备及涂板 | 第56页 |
·供试滤纸片的制备 | 第56页 |
·对照溶液及提取物溶液的配制 | 第56-57页 |
·滤纸片法测试抑菌活性 | 第57页 |
·最低抑菌浓度(MIC)的测定 | 第57页 |
3 结果与分析 | 第57-60页 |
·新疆一枝蒿提取物抑菌活性 | 第57-59页 |
·黄酮提取物抑菌活性 | 第57-58页 |
·多糖提取物抑菌活性 | 第58-59页 |
·两种提取物抑菌活性比较 | 第59页 |
·最低抑菌浓度(MIC)的测定 | 第59-60页 |
4 结论 | 第60-61页 |
第三章 新疆一枝蒿免疫活性研究 | 第61-79页 |
第一节 新疆一枝提取物体内免疫活性研究 | 第62-70页 |
1 仪器、材料与试剂 | 第62页 |
2 实验方法 | 第62-65页 |
·MTT 法预实验 | 第62-63页 |
·小鼠体内免疫 | 第63-64页 |
·流式细胞仪检测 DC marker | 第64-65页 |
·实验分组 | 第64页 |
·实验过程 | 第64-65页 |
3 结果与分析 | 第65-69页 |
·MTT 预实验结果 | 第65页 |
·新疆一枝蒿黄酮提取物对 DC 细胞表面抗原表达的影响 | 第65-69页 |
·口服途径 DC marker 表达分析 | 第65-67页 |
·滴鼻途径 DC marker 表达分析 | 第67-69页 |
3 结论 | 第69-70页 |
第二节 新疆一枝提取物体外免疫活性研究 | 第70-79页 |
1 仪器、材料与试剂 | 第70页 |
2 实验方法 | 第70-72页 |
·小鼠骨髓 DC 细胞的分离诱导培养 | 第70-71页 |
·小鼠骨髓 DC 细胞检测鉴定 | 第71-72页 |
3 结果与分析 | 第72-78页 |
·小鼠骨髓 DC 细胞诱导的观察 | 第72-73页 |
·小鼠骨髓 DC 细胞的鉴定 | 第73-74页 |
·DC 细胞在主细胞群中的数量 | 第73-74页 |
·DC 细胞表面抗原 CD11c 表达量的测定 | 第74页 |
·新疆一枝蒿黄酮提取物对 DC 细胞表面抗原表达的影响 | 第74-76页 |
·DC 细胞表面抗原 CD86 表达量的测定 | 第74-75页 |
·DC 细胞表面抗原 CD40 表达量的测定 | 第75-76页 |
·新疆一枝蒿多糖提取物对 DC 细胞表面抗原表达的影响 | 第76-78页 |
·DC 细胞表面抗原 CD86 表达量的测定 | 第76-77页 |
·DC 细胞表面抗原 CD40 表达量的测定 | 第77-78页 |
4 结论 | 第78-79页 |
第四章 新疆一枝蒿挥发性成分 GC-MS 分析 | 第79-83页 |
1 仪器、材料与试剂 | 第79页 |
2 实验方法 | 第79-80页 |
·挥发油的提取 | 第79页 |
·气相色谱-质谱测定 | 第79-80页 |
·色谱条件 | 第79-80页 |
·质谱条件 | 第80页 |
3 结果与讨论 | 第80-83页 |
4 结论 | 第83页 |
第五章 新疆一枝蒿微量元素测定 | 第83-87页 |
1 材料、试剂与仪器 | 第83-84页 |
2 实验方法 | 第84-85页 |
·仪器工作条件 | 第84页 |
·微波消解仪工作条件 | 第84页 |
·火焰原子化器工作条件 | 第84页 |
·样品微波消解处理 | 第84-85页 |
·建立标准曲线 | 第85页 |
3 结果与讨论 | 第85-86页 |
·含量测定 | 第85-86页 |
·精密度及回收率测定 | 第86页 |
4 结论 | 第86-87页 |
总结与展望 | 第87-88页 |
参考文献 | 第88-92页 |
硕士期间发表论文情况 | 第92-93页 |
致谢 | 第93页 |