| 致谢 | 第1-8页 |
| 目录 | 第8-11页 |
| 摘要 | 第11-13页 |
| Abstract | 第13-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-35页 |
| 1. 多芳环化合物 | 第16-17页 |
| 2. 多芳环化合物的生物降解 | 第17-27页 |
| ·降解多芳环有机化合物的微生物种类 | 第18-21页 |
| ·多芳环化合物生物代谢途径 | 第21-26页 |
| ·萘的生物降解途径 | 第21-22页 |
| ·嘧啶水杨酸类除草剂降解途径 | 第22-26页 |
| ·多芳环化合物微生物降解机制 | 第26-27页 |
| 3. 蛋白质组学在多芳环化合物生物降解研究中的应用 | 第27-31页 |
| ·蛋白质组学 | 第27-30页 |
| ·蛋白质组学研究内容 | 第27-28页 |
| ·蛋白质组学的主要研究策略 | 第28页 |
| ·蛋白质组学的主要研究技术 | 第28-30页 |
| ·蛋白质组学在多芳环化合物生物降解中的应用 | 第30-31页 |
| 4. 微生物降解基因与基因工程菌的研究 | 第31-32页 |
| 5. 原生质体融合技术 | 第32-33页 |
| 6. 选题依据和研究意义 | 第33-35页 |
| 第二章 高效降解菌的筛选和降解特性研究 | 第35-60页 |
| 1. 材料与方法 | 第35-37页 |
| ·实验材料 | 第35页 |
| ·培养基 | 第35-36页 |
| ·溶液和缓冲液 | 第36页 |
| ·主要仪器 | 第36-37页 |
| 2. 实验方法 | 第37-41页 |
| ·丙酯草醚原药纯化 | 第37页 |
| ·降解菌富集、筛选和分离纯化 | 第37-38页 |
| ·高效降解菌的鉴定 | 第38-40页 |
| ·形态特征观察 | 第38页 |
| ·个体形态描述 | 第38页 |
| ·生理生化鉴定 | 第38-39页 |
| ·16S rDNA鉴定 | 第39-40页 |
| ·萘/丙酯草醚的降解率的测定 | 第40-41页 |
| ·萘的萃取及测定方法 | 第40-41页 |
| ·丙酯草醚萃取及测定方法 | 第41页 |
| 3. 结果与讨论 | 第41-58页 |
| ·萘/丙酯草醚提取率的测定 | 第41-42页 |
| ·高效降解菌的筛选及鉴定 | 第42-51页 |
| ·土壤中降解丙酯草醚/萘微生物的筛选 | 第42-43页 |
| ·降解菌鉴定 | 第43-51页 |
| ·降解菌株的降解特性研究 | 第51-58页 |
| ·pH对菌株降解率的影响 | 第51-53页 |
| ·温度对降解特性的影响 | 第53-54页 |
| ·底物初始浓度对降解率的影响 | 第54-55页 |
| ·接种量对菌株M3-1降解丙酯草醚的影响 | 第55-57页 |
| ·降解菌降解丙酯草醚/萘的生长曲线测定 | 第57-58页 |
| 4. 小结 | 第58-60页 |
| 第三章 AMYCOLATOPSIS SP.M3-1降解丙酯草醚代谢途径的研究 | 第60-84页 |
| 1. 材料和方法 | 第61-66页 |
| ·实验试剂 | 第61-62页 |
| ·实验材料和仪器 | 第62-63页 |
| ·实验方法 | 第63-66页 |
| ·丙酯草醚在水体中降解途径试验 | 第63-64页 |
| ·丙酯草醚在土壤中降解特性试验 | 第64-65页 |
| ·丙酯草醚提取方法 | 第65页 |
| ·HPLC、HPLC-LSC和LC-MS分析 | 第65-66页 |
| 2. 结果与讨论 | 第66-82页 |
| ·水体中AMYCOLATOPSIS SP.M3-1降解丙酯草醚规律及代谢途径 | 第66-77页 |
| ·水体中Amycolatopsis sp.M3-1降解ZJ0273代谢中间物的结构鉴定 | 第66-73页 |
| ·水体中Amycolatopsis sp.M3-1降解丙酯草醚动态 | 第73-74页 |
| ·水体中Amycolatopsis sp.M3-1降解丙酯草醚的代谢途径 | 第74-77页 |
| ·丙酯草醚在土壤中降解特性和规律 | 第77-82页 |
| ·丙酯草醚在灭菌和未灭菌土壤中的降解特性 | 第77-80页 |
| ·丙酯草醚在接种Amycolatopsis sp.M3-1土壤中的降解特性 | 第80-81页 |
| ·丙酯草醚在土壤中的代谢途径 | 第81-82页 |
| 3. 小结 | 第82-84页 |
| 第四章 丙酯草醚降解途径蛋白质组学研究 | 第84-96页 |
| 1. 材料与方法 | 第84-92页 |
| ·试验菌株与试剂 | 第84页 |
| ·溶液配方 | 第84-88页 |
| ·菌株培养与诱导 | 第88页 |
| ·菌体收获 | 第88页 |
| ·细胞破壁 | 第88页 |
| ·双向凝胶电泳 | 第88-92页 |
| ·第一向等电聚焦 | 第88-90页 |
| ·胶条的平衡 | 第90页 |
| ·第二向SDS-PAGE电泳 | 第90-92页 |
| ·图像采集和分析 | 第92页 |
| ·质谱分析和数据库检索 | 第92页 |
| 2. 结果与分析 | 第92-94页 |
| ·双向电泳结果分析 | 第92-93页 |
| ·蛋白质点的MALDI-TOF结果分析 | 第93-94页 |
| 3. 小结 | 第94-96页 |
| 第五章 丙酯草醚和萘降解工程菌的构建及降解性能研究 | 第96-120页 |
| 1. 材料与方法 | 第97-105页 |
| ·实验材料 | 第97-98页 |
| ·供试菌株 | 第97页 |
| ·药品及试剂 | 第97页 |
| ·实验仪器 | 第97页 |
| ·培养基 | 第97-98页 |
| ·溶液 | 第98页 |
| ·实验方法 | 第98-105页 |
| ·制备营养缺陷型菌株 | 第98-101页 |
| ·原生质体形成及其再生工艺条件的研究 | 第101-103页 |
| ·原生质体融合 | 第103-105页 |
| ·融合子复筛及其降解特性 | 第105页 |
| 2. 结果与讨论 | 第105-118页 |
| ·菌株NAI8和M3-1生长曲线 | 第105-106页 |
| ·紫外诱变营养缺陷型与原生质体制备 | 第106-111页 |
| ·紫外照射时间 | 第106页 |
| ·青霉素淘汰野生型剂量 | 第106-107页 |
| ·营养缺陷型菌株的检出及生长谱的确定 | 第107-108页 |
| ·原生质体制备与再生工艺条件 | 第108-111页 |
| ·原生质体融合与融合子鉴定 | 第111-114页 |
| ·融合子的形态特征 | 第114-115页 |
| ·融合子降解性能的测定 | 第115页 |
| ·工程菌降解性能的研究 | 第115-118页 |
| ·pH对工程菌MN6降解性能的影响 | 第115-117页 |
| ·温度对工程菌MN6降解性能的影响 | 第117-118页 |
| ·接种量对工程菌MN6降解性能的影响 | 第118页 |
| 3. 小结 | 第118-120页 |
| 第六章 结论和展望 | 第120-124页 |
| 1. 主要结论 | 第120-122页 |
| 2. 主要创新点 | 第122页 |
| 3. 论文不足和研究展望 | 第122-124页 |
| 参考文献 | 第124-135页 |
| 博士期间发表的主要论文 | 第135页 |
