摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
英文缩写词表 | 第7-10页 |
1 文献综述 | 第10-17页 |
·研究的目的和意义 | 第10-11页 |
·国内外研究动态 | 第11-14页 |
·国外木材 DNA 提取研究动态 | 第12页 |
·国外 DNA 分子标记研究动态 | 第12-14页 |
·国内 DNA 分子标记研究动态 | 第14页 |
·ITS 序列结构及特点 | 第14-16页 |
·本文的主要研究内容 | 第16-17页 |
2 材料与方法 | 第17-27页 |
·材料 | 第17-20页 |
·材料来源 | 第17页 |
·材料的运输及保存 | 第17页 |
·材料的预处理 | 第17页 |
·主要试剂及试剂盒 | 第17-18页 |
·主要试剂的配置 | 第18-19页 |
·主要实验仪器 | 第19-20页 |
·方法 | 第20-27页 |
·木材基因组 DNA 提取 | 第20-22页 |
·改良的 CTAB 法 | 第20页 |
·DNA 抽提试剂盒法 | 第20-21页 |
·PTB(N-phenacylthiazolium bromide)法 | 第21页 |
·不同部位降香黄檀木材 DNA 提取方法的比较 | 第21页 |
·经温度处理后的降香黄檀木材 DNA 提取 | 第21页 |
·DNA 纯度和浓度的检测 | 第21-22页 |
·基因组 DNA 的纯化 | 第22页 |
·ITS 序列引物筛选及 PCR 反应体系建立 | 第22-24页 |
·引物来源及设计 | 第22-23页 |
·通用引物扩增 ITS 序列 | 第23页 |
·特异性引物扩增 ITS 序列 | 第23-24页 |
·PCR 反应体系优化 | 第24页 |
·PCR 产物的凝胶电泳检测 | 第24页 |
·PCR 扩增 ITS 序列 | 第24页 |
·降香黄檀与多裂黄檀 ITS 序列扩增 | 第24页 |
·经不同温度干燥处理后的降香黄檀心、边材 ITS 序列扩增 | 第24页 |
·PCR 产物的纯化、克隆、测序 | 第24-26页 |
·PCR 产物的纯化回收 | 第24-25页 |
·PCR 产物的连接 | 第25页 |
·大肠杆菌转化 | 第25-26页 |
·克隆体的蓝白斑筛选 | 第26页 |
·测序 | 第26页 |
·ITS 序列分析及系统学分析研究 | 第26-27页 |
3 结果与分析 | 第27-39页 |
·木材 DNA 提取 | 第27-29页 |
·三种方法提取降香黄檀不同部位木材 DNA 的比较 | 第27-28页 |
·不同干燥温度处理对降香黄檀木材 DNA 提取的影响 | 第28-29页 |
·PCR 扩增 ITS 序列 | 第29-30页 |
·内生菌对木材 ITS 序列扩增的影响 | 第29-30页 |
·PCR 反应体系及参数对 ITS 序列扩增的影响 | 第30-31页 |
·PCR 反应体系的调整 | 第30-31页 |
·引物浓度对 PCR 反应的影响 | 第30页 |
·Mg~(2+)浓度对 PCR 反应的影响 | 第30-31页 |
·PCR 反应参数的调整 | 第31页 |
·退火温度的调整 | 第31页 |
·PCR 反应体系的调整 | 第31页 |
·优化后的 PCR 反应条件及电泳条件 | 第31-32页 |
·PCR 反应条件 | 第31-32页 |
·PCR 产物电泳条件 | 第32页 |
·PCR 扩增产物电泳图谱 | 第32-33页 |
·降香黄檀与多裂黄檀 ITS 序列扩增结果 | 第32页 |
·温度处理对降香黄檀心、边材 ITS 序列扩增的影响 | 第32-33页 |
·降香黄檀及多裂黄檀 rDNA-ITS 序列比对 | 第33-38页 |
·降香黄檀与多裂黄檀 rDNA-ITS 序列测序结果 | 第33-35页 |
·海南省林科所降香黄檀边材 rDNA-ITS 序列 | 第33-34页 |
·海南省霸王岭降香黄檀心材 rDNA-ITS 序列 | 第34页 |
·广西大学降香黄檀心材 rDNA-ITS 序列 | 第34页 |
·华南农业大学降香黄檀心材 rDNA-ITS 序列 | 第34-35页 |
·广西大学多裂黄檀心材 rDNA-ITS 序列 | 第35页 |
·降香黄檀与多裂黄檀 ITS 序列比对 | 第35-38页 |
·降香黄檀与多裂黄檀遗传差异及聚类分析 | 第38-39页 |
4 结论与讨论 | 第39-41页 |
参考文献 | 第41-49页 |
致谢 | 第49-50页 |
作者简介 | 第50页 |