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葡萄籽提取物F2抗胶质瘤活性及作用机制研究

中文摘要第1-13页
英文摘要第13-16页
前言第16-45页
第一章 以甲酰肽受体(FPR)为靶点的抗胶质瘤药物筛选第45-76页
 前言第45-46页
 第一节 实验材料与方法第46-51页
  1 实验材料第46-47页
  2 实验方法第47-51页
   ·待筛样品的来源和配制第47页
   ·细胞培养第47-48页
   ·细胞存活率测定:MTT分析法第48页
   ·趋化实验第48-51页
   ·统计学方法第51页
 第二节 实验结果第51-72页
  1 fMLF诱导的U-87细胞趋化模型的建立第51-52页
  2 系列待测物对U-87细胞趋化活性的影响第52-58页
  3 考察具有抑制趋化活性的样品对U-87细胞的敏感性第58-60页
  4 F2对多种肿瘤细胞系的敏感性第60-72页
 第三节 讨论第72-75页
 小结第75-76页
第二章 F2对人恶性胶质瘤细胞系U-87的FPR表达与活化效应的影响第76-102页
 前言第76-77页
 第一节 实验材料与方法第77-87页
  1 实验材料第77-79页
  2 实验方法第79-87页
   ·细胞培养第79页
   ·F2配制方法第79-80页
   ·趋化实验第80页
   ·细胞内钙离子浓度的测定第80页
   ·间接免疫荧光细胞化学染色结合激光共聚焦显微扫描技术第80-81页
   ·RT-PCR第81-84页
   ·Western blot analysis(免疫印迹法)第84-87页
   ·流式细胞术考察ETFR细胞FPR的表达第87页
 第二节 实验结果第87-99页
  1 F2对人U-87恶性胶质瘤细胞系FPR活化效应的影响第87-93页
  2 F2对人恶性胶质瘤细胞系U-87 FPR表达的影响第93-94页
  3 F2不能直接激活FPR,但可以抑制fMLF诱导的细胞效应第94-99页
 第三节 讨论第99-101页
 小结第101-102页
第三章 F2诱导人恶性胶质瘤细胞系U-87的死亡机制研究第102-137页
 前言第102页
 第一节 实验材料与方法第102-109页
  1 实验材料第102-103页
  2 实验方法第103-109页
   ·细胞培养第103-104页
   ·细胞存活率的测定:MTT分析法细胞存活率的测定:MTT分析法第104页
   ·AO/EB染色第104页
   ·细胞周期分析第104-105页
   ·Western blot analysis(免疫印迹法)第105页
   ·细胞内钙离子浓度的测定第105-106页
   ·活性氧测定第106页
   ·线粒体膜电位测定第106-107页
   ·单细胞凝胶电泳技术第107-108页
   ·免疫细胞化学染色检测培养细胞中GFAP、vimentin蛋白表达第108-109页
   ·统计学处理方法第109页
 第二节 实验结果第109-133页
  1 F2诱导人恶性胶质瘤细胞系U-87的死亡机制研究第109-116页
  2 F2诱导U-87细胞paraptosis样细胞死亡的信号通路研究第116-118页
  3 活性氧是介导F2细胞毒作用的重要机制第118-132页
  4 F2对U-87细胞分化的影响第132-133页
 第三节 讨论第133-136页
 小结第136-137页
第四章 F2对人恶性胶质瘤U-87细胞的诱导迁移作用第137-144页
 前言第137页
 第一节 实验材料与方法第137-138页
  1 实验材料第137页
  2 实验方法第137-138页
   ·F2的配制方法第137-138页
   ·趋化实验第138页
   ·Western blot第138页
   ·统计学处理方法第138页
 第二节 实验结果第138-142页
  1 F2对U-87细胞的诱导迁移作用第138-140页
  2 F2诱导的U-87细胞迁移主要为趋化,但有轻微的化学激活第140页
  3 F2诱导的U-87细胞迁移能被PTX所抑制第140-141页
  4 非细胞毒浓度的F2显著诱导U-87细胞ERK1/2磷酸化第141-142页
 第三节 讨论第142-143页
 小结第143-144页
结论第144-145页
参考文献第145-162页
致谢第162-163页
缩略词表第163-164页
发表文章第164-166页
个人简历第166页

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