| 中文摘要 | 第1-3页 |
| Abstract | 第3-7页 |
| 引言 | 第7-8页 |
| 第一章 材料与方法 | 第8-16页 |
| ·仪器、试剂和耗材 | 第8-10页 |
| ·主要仪器和设备 | 第8页 |
| ·试剂和耗材 | 第8-9页 |
| ·主要试剂配置 | 第9-10页 |
| ·外源性热休克蛋白的检测 | 第10-12页 |
| ·重组腺病毒感染293细胞 | 第10页 |
| ·小鼠脑组织外源性HSP70表达的检测 | 第10-12页 |
| ·脑缺血缺氧大鼠模型的建立 | 第12-13页 |
| ·实验动物 | 第12页 |
| ·动物分组与处理 | 第12页 |
| ·大鼠尾静脉注射 | 第12页 |
| ·制备脑缺血缺氧大鼠模型 | 第12-13页 |
| ·标本的处理 | 第13-15页 |
| ·标本的取材 | 第13页 |
| ·标本分组 | 第13页 |
| ·制作HE染色石蜡切片 | 第13-14页 |
| ·HSP70的免疫组织化学染色 | 第14-15页 |
| ·RT-PCR检测大鼠脑组织HSP70 mRNA的转录表达 | 第15页 |
| ·统计学分析 | 第15-16页 |
| 第二章 结果 | 第16-21页 |
| ·重组腺病毒感染293细胞 | 第16页 |
| ·RT-PCR检测小鼠脑组织外源性HSP70的转录表达 | 第16-17页 |
| ·RT-PCR检测大鼠HSP70基因表达 | 第17-19页 |
| ·免疫组化检测HSP70的表达 | 第19-20页 |
| ·HE染色病理切片观察 | 第20-21页 |
| 第三章 讨论 | 第21-26页 |
| ·热休克蛋白的概述 | 第21-22页 |
| ·腺病毒载体的选择 | 第22-23页 |
| ·腺病毒介导的HSP70对缺血缺氧大鼠的保护作用 | 第23-26页 |
| 结论 | 第26-27页 |
| 参考文献 | 第27-30页 |
| 综述 | 第30-41页 |
| 参考文献 | 第38-41页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第41-42页 |
| 致谢 | 第42-43页 |