| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 1 引言 | 第12-22页 |
| ·海产动物精子超低温保存概况 | 第12-16页 |
| ·精子低温保存原理 | 第12页 |
| ·精子低温保存发展史 | 第12-13页 |
| ·抗冻保护剂 | 第13-14页 |
| ·冷冻 | 第14-15页 |
| ·解冻 | 第15页 |
| ·冷冻技术在海产贝类中的应用前景 | 第15-16页 |
| ·精液质量检测方法进展 | 第16-19页 |
| ·常规染色法 | 第16-17页 |
| ·低渗肿胀试验 | 第17页 |
| ·荧光染色技术 | 第17-19页 |
| ·栉江珧研究概况 | 第19-20页 |
| ·本文研究意义及研究内容 | 第20-22页 |
| ·研究意义 | 第20页 |
| ·研究内容 | 第20-22页 |
| 2 栉江珧精子的超低温冷冻保存研究 | 第22-31页 |
| ·材料与方法 | 第22-23页 |
| ·试验材料 | 第22页 |
| ·实验试剂及仪器 | 第22页 |
| ·方法 | 第22-23页 |
| ·结果与分析 | 第23-28页 |
| ·栉江珧精子在不同抗冻液和降温程序条件下的超低温保存效果 | 第23-24页 |
| ·冷冻样品中不同 DMSO 浓度对精子质膜完整性的影响 | 第24-25页 |
| ·不同平衡时间对精子保存效果的影响 | 第25-26页 |
| ·样品体积对精子保存效果的影响 | 第26-27页 |
| ·解冻方式对精子保存效果的影响 | 第27页 |
| ·不同超低温保存时间复苏效果比较 | 第27-28页 |
| ·讨论 | 第28-31页 |
| ·不同抗冻保护剂及浓度对精子保存效果的影响 | 第28-29页 |
| ·不同降温速度对精子保存效果的影响 | 第29页 |
| ·不同平衡时间对精子保存效果的影响 | 第29页 |
| ·不同样品体积对精子保存效果的影响 | 第29-30页 |
| ·不同解冻方式对精子保存效果的影响 | 第30-31页 |
| 3 双荧光复染法检测栉江珧精子质膜完整性的研究 | 第31-39页 |
| ·材料与方法 | 第31-32页 |
| ·精子的获得及样品的制备 | 第31页 |
| ·实验试剂及仪器 | 第31-32页 |
| ·不同染料浓度和染色时间下精子死亡率的比较 | 第32页 |
| ·双荧光复染法检测理论死亡率和实测死亡率的相关性 | 第32页 |
| ·双荧光染色法检测冷冻前后精子质膜完整率 | 第32页 |
| ·统计学分析 | 第32页 |
| ·结果与分析 | 第32-36页 |
| ·PI 和 FDA 的荧光染色结果观察 | 第32-33页 |
| ·FDA 和 PI 最适染色浓度和时间的确定 | 第33-34页 |
| ·理论死亡率和实测死亡率相关性比较 | 第34-35页 |
| ·双荧光复染法检测冷冻前后精子质膜完整率 | 第35-36页 |
| ·讨论 | 第36-39页 |
| ·精子质膜完整性检测 | 第36-37页 |
| ·PI 和 FDA 荧光染色 | 第37页 |
| ·冷冻对精子质膜完整性的影响 | 第37-39页 |
| 4 栉江珧(Atrina pectinata)精子线粒体活性的荧光检测 | 第39-44页 |
| ·材料与方法 | 第39-40页 |
| ·精子的获取与样品的制备 | 第39页 |
| ·实验试剂及仪器 | 第39页 |
| ·不同染料浓度和染色时间条件下精子线粒体活性的检测 | 第39页 |
| ·双荧光复染法检测冷冻前后精子线粒体活性 | 第39-40页 |
| ·统计学分析 | 第40页 |
| ·结果与分析 | 第40-42页 |
| ·Rh123 和 PI 染色结果观察 | 第40-41页 |
| ·Rh123 适宜染色浓度及时间的确定 | 第41页 |
| ·冷冻前后精子的线粒体活性 | 第41-42页 |
| ·讨论 | 第42-44页 |
| ·精子线粒体活性检测 | 第42页 |
| ·冷冻对精子线粒体活性的影响 | 第42-44页 |
| 5 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 作者简介 | 第54-55页 |
| 导师简介 | 第55页 |
