摘要 | 第1-12页 |
ABSTRACT | 第12-14页 |
縮写词(Abbreviation) | 第14-15页 |
第一章 绪论 | 第15-27页 |
·获得多能性干细胞的方法 | 第15-18页 |
·体细胞核移植 | 第15-16页 |
·细胞融合 | 第16页 |
·体外培养 | 第16-17页 |
·转录因子诱导 | 第17-18页 |
·iPS细胞的筛选和鉴定 | 第18-22页 |
·iPS细胞的筛选 | 第18-20页 |
·iPS细胞的鉴定 | 第20-22页 |
·细胞表型与表面标志的鉴定 | 第20页 |
·表观遗传状态的鉴定 | 第20-21页 |
·染色体状态与基因表达模式 | 第21页 |
·发育潜能 | 第21-22页 |
·iPS细胞存在问题 | 第22-23页 |
·致癌性 | 第22页 |
·效率低 | 第22页 |
·以病毒为载体的安全性问题 | 第22-23页 |
·来源于多能干细胞的组织在移植后的存活率低 | 第23页 |
·iPS细胞的应用前景 | 第23-24页 |
·本项研究的立题依据 | 第24-27页 |
第二章 小鼠皮肤细胞的培养 | 第27-37页 |
·实验材料 | 第27页 |
·主要试剂和仪器 | 第27页 |
·实验方法 | 第27-29页 |
·取材 | 第27-28页 |
·组织块贴壁培养 | 第28页 |
·分散单细胞接种培养 | 第28-29页 |
·细胞消化传代 | 第29页 |
·细胞计数 | 第29页 |
·细胞的活体染色 | 第29页 |
·细胞贴壁率统计 | 第29页 |
·实验结果 | 第29-34页 |
·组织块贴壁培养结果 | 第29-30页 |
·几种消化方式对小白鼠皮肤组织块的消化效果 | 第30-31页 |
·小白鼠皮肤细胞的体外生长特征 | 第31-32页 |
·小白鼠皮肤细胞的传代培养 | 第32-34页 |
·胰蛋白酶作用时间对传代培养的影响 | 第32-33页 |
·胰蛋白酶在不同缓冲液中对消化效果的影响 | 第33-34页 |
·小白鼠皮肤原代细胞长期培养下的变化 | 第34页 |
·讨论 | 第34-37页 |
第三章 ES样细胞集落碱性磷酸酶的检测 | 第37-43页 |
·实验材料 | 第37页 |
·主要试剂和仪器 | 第37-38页 |
·实验方法 | 第38页 |
·细胞培养 | 第38页 |
·碱性磷酸梅(AKP)的检测 | 第38页 |
·实验结果 | 第38-40页 |
·细胞培养结果 | 第38-40页 |
·AKP检测结果 | 第40页 |
·讨论 | 第40-43页 |
第四章 ES样细胞集落OCT4的检测 | 第43-49页 |
·实验材料 | 第43页 |
·主要试剂和仪器 | 第43-44页 |
·实验方法 | 第44页 |
·细胞培养 | 第44页 |
·Oct4免疫荧光检测 | 第44页 |
·实验结果 | 第44-46页 |
·细胞培养结果 | 第44-46页 |
·Oct4检测结果 | 第46页 |
·讨论 | 第46-49页 |
第五章 汇合依赖型体细胞体外重编程模型 | 第49-57页 |
·汇合依赖型体外体细胞重编程方法 | 第49-50页 |
·汇合依赖型细胞重编程方法的理论研究 | 第50-55页 |
·汇合后形成的细胞集落表达Oct4阳性 | 第50页 |
·主要的干细胞转录因子和信号调节 | 第50-51页 |
·细胞汇合与HGF的刺激可能协同激活了β-catenin与Stat3信号 | 第51-54页 |
·细胞内受体信号可能为主要的干性因子的表达建立特殊的细胞质内环境 | 第54-55页 |
·结论 | 第55-57页 |
第六章 其它干细胞标志的初步检测 | 第57-61页 |
·实验材料 | 第57页 |
·主要试剂和仪器 | 第57页 |
·实验方法 | 第57-58页 |
·细胞培养 | 第57-58页 |
·免疫荧光检测 | 第58页 |
·实验结果 | 第58-59页 |
·细胞培养结果 | 第58页 |
·免疫荧光染色结果 | 第58-59页 |
·讨论 | 第59-61页 |
本文总结及展望 | 第61-65页 |
参考文献 | 第65-77页 |
致谢 | 第77-79页 |
攻读学位期间发表的论文和发明专利 | 第79-81页 |
学位论文评阅及答辩情况表 | 第81页 |