前言 | 第1-5页 |
中文摘要 | 第5-8页 |
Abstract | 第8-11页 |
英文缩写词 | 第11-15页 |
第1章 绪论 | 第15-27页 |
第1节 五味子多糖的研究进展 | 第15-20页 |
1 五味子多糖的提取 | 第15-16页 |
2 五味子多糖的纯化分级 | 第16页 |
3 五味子多糖的药理作用 | 第16-20页 |
第2节 桔梗多糖的研究进展 | 第20-25页 |
1 桔梗多糖的提取 | 第20-21页 |
2 测定 | 第21页 |
3 药理作用 | 第21-25页 |
第3节 实验设计与创新点 | 第25-27页 |
1 实验方案 | 第25页 |
2 实验流程 | 第25页 |
3 研究特色和创新点 | 第25-27页 |
第2章 人结直肠癌中CD133~+/CD44~+表型的细胞亚群的分离和鉴定及其生物学行为研究 | 第27-43页 |
1 材料和方法 | 第28-35页 |
·材料 | 第28-31页 |
·试验方法 | 第31-35页 |
·统计学处理 | 第35页 |
2 试验结果 | 第35-38页 |
·分选 CD133~+/CD44~+肿瘤细胞 | 第35-36页 |
·集落形成实验 | 第36页 |
·结肠癌中 CD133~+/CD44~+细胞亚群在动物成瘤模型中的成瘤情况 | 第36-37页 |
·Western blot 检测 CD133 和 CD44 的表达 | 第37-38页 |
3 讨论 | 第38-42页 |
4 小结 | 第42-43页 |
第3章 ASPS、PRPS 对人结直肠癌细胞株 HT-29 的干预作用研究 | 第43-63页 |
1 材料和方法 | 第44-49页 |
·材料 | 第44-45页 |
·试验方法 | 第45-49页 |
·统计学处理 | 第49页 |
2 实验结果 | 第49-57页 |
·ASPS、PRPS 体外对肿瘤 HT-29 细胞增殖活性的影响 | 第49-50页 |
·ASPS、PRPS 含药血清对肿瘤 HT-29 细胞增殖活性的影响 | 第50-51页 |
·ASPS、PRPS 含药血清对 HT-29 细胞的形态影响 | 第51-52页 |
·ASPS、PRPS 含药血清对 HT-29 细胞侵袭能力的影响 | 第52-53页 |
·荧光显微镜观察 ASPS、PRPS 含药血清对 HT-29 细胞凋亡影响 | 第53页 |
·流式细胞术检测 ASPS、PRPS 含药血清对 HT-29 细胞凋亡的影响 | 第53-55页 |
·Western blot 实验分析 ASPS、PRPS 含药血清对肿瘤凋亡基因 bcl-2, bαx 的表达水平影响 | 第55-56页 |
·Western blot 实验分析 ASPS、PRPS 含药血清对 Caspase-3 的表达水平影响 | 第56-57页 |
3 讨论 | 第57-62页 |
4 小结 | 第62-63页 |
第4章 ASPS、PRPS 对人结直肠癌肿瘤干细胞的调控作用 | 第63-73页 |
1 材料和方法 | 第64-66页 |
·材料 | 第64页 |
·试验方法 | 第64-65页 |
·统计方法 | 第65-66页 |
2 结果 | 第66-69页 |
·ASPS、PRPS 含药血清对 CD133~+/CD44~+细胞集落克隆的影响 | 第66页 |
·ASPS、PRPS 含药血清对 CD133~+/CD44~+细胞亚群增殖的干预作用 | 第66-68页 |
·Western blot 检测 ASPS、PRPS 含药血清对 CD133~+/CD44~+细胞内β-catenin 的表达的影响 | 第68-69页 |
3 讨论 | 第69-72页 |
4 小结 | 第72-73页 |
第5章 结论 | 第73-74页 |
参考文献 | 第74-87页 |
作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第87-88页 |
致谢 | 第88页 |