摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
第一章 绪论 | 第19-33页 |
1.1 肿瘤治疗 | 第19-22页 |
1.1.1 基因治疗 | 第19-21页 |
1.1.1.1 基因载体的分类 | 第19-21页 |
1.1.2 光热治疗 | 第21页 |
1.1.3 其他治疗方式 | 第21-22页 |
1.1.4 联合治疗 | 第22页 |
1.2 影像学 | 第22-25页 |
1.2.1 正电子发射断层扫描(PET) | 第22-23页 |
1.2.2 X-射线计算机断层扫描(CT) | 第23页 |
1.2.3 核磁共振成像(MR) | 第23-24页 |
1.2.4 光声成像(PA) | 第24-25页 |
1.2.5 上转换发光(UCL) | 第25页 |
1.2.6 多模态成像 | 第25页 |
1.3 有机/无机诊疗平台 | 第25-31页 |
1.3.1 基于金纳米颗粒构建有机/无机诊疗平台 | 第26-29页 |
1.3.1.1 金纳米颗粒的性质及其表面修饰 | 第26-29页 |
1.3.1.2 金纳米颗粒在诊疗平台中的应用 | 第29页 |
1.3.2 上转换发光纳米颗粒在诊疗平台中的应用 | 第29-30页 |
1.3.3 天然多糖在诊疗平台中的应用 | 第30-31页 |
1.4 本课题的立题意义 | 第31-33页 |
第二章 稀土纳米棒-金核壳结构的构建、表面修饰及其生物学应用 | 第33-65页 |
2.1 前言 | 第33-35页 |
2.2 药品与仪器 | 第35-37页 |
2.2.1 实验药品 | 第35-36页 |
2.2.2 实验仪器 | 第36-37页 |
2.3 实验方法 | 第37-44页 |
2.3.1 稀土纳米棒RE的合成 | 第37页 |
2.3.2 稀土纳米棒包二氧化硅RE@SiO_2的合成 | 第37页 |
2.3.3 RE-Au的合成 | 第37-38页 |
2.3.3.1 RE-NH_2的合成 | 第37-38页 |
2.3.3.2 金纳米簇的合成 | 第38页 |
2.3.3.3 RE-Au纳米棒的制备 | 第38页 |
2.3.4 SS-PGEA的合成 | 第38-39页 |
2.3.5 RE-Au-PGEA的合成 | 第39页 |
2.3.6 RE-Au-PGEA的表征 | 第39页 |
2.3.7 RE-Au-PGEA/DNA络合物的表征 | 第39-40页 |
2.3.7.1 琼脂糖凝胶电泳阻滞实验 | 第39-40页 |
2.3.7.2 粒径和电位测试 | 第40页 |
2.3.7.3 RE-Au-PGEA/DNA络合物形貌表征 | 第40页 |
2.3.8 细胞毒性测试 | 第40页 |
2.3.9 转染效率测试 | 第40-41页 |
2.3.10 吞噬效率测试 | 第41页 |
2.3.11 体外和体内的光热效果测试 | 第41-42页 |
2.3.12 体外和体内的PTT/GT治疗 | 第42页 |
2.3.13 H&E染色和免疫组化分析 | 第42-43页 |
2.3.14 RE-Au-PGEA2的体外和体内的PA,CT,MR及UCL成像 | 第43-44页 |
2.3.14.1 体外成像 | 第43页 |
2.3.14.2 体内成像 | 第43-44页 |
2.4 结果与讨论 | 第44-62页 |
2.4.1 RE-Au-PGEA纳米颗粒的制备与表征 | 第44-50页 |
2.4.2 RE-Au-PGEA复合纳米材料体外基因转染的表征 | 第50-55页 |
2.4.2.1 琼脂凝胶电泳测试 | 第50-51页 |
2.4.2.2 粒度电位测试 | 第51-52页 |
2.4.2.3 细胞毒性测试 | 第52-53页 |
2.4.2.4 基因转染测试 | 第53-54页 |
2.4.2.5 细胞吞噬测试 | 第54-55页 |
2.4.3 RE-Au-PGEA2的光热治疗性能测试 | 第55-58页 |
2.4.3.1 RE-Au-PGEA2的光学性能 | 第55页 |
2.4.3.2 RE-Au-PGEA2的光热性能测试 | 第55-57页 |
2.4.3.3 RE-Au-PGEA2对肿瘤的光热治疗性能的测试 | 第57-58页 |
2.4.4 基因治疗和光热治疗的联合治疗 | 第58-60页 |
2.4.4.1 联合治疗在体外的测试 | 第58-59页 |
2.4.4.2 联合治疗在体内的测试 | 第59-60页 |
2.4.5 PA/CT/MR/UCL多模式成像 | 第60-62页 |
2.5 本章小结 | 第62-65页 |
第三章 多糖/金纳米棒可降解纳米颗粒用于多模态成像与靶向治疗 | 第65-87页 |
3.1 前言 | 第65-67页 |
3.2 实验药品和仪器 | 第67页 |
3.2.1 实验药品 | 第67页 |
3.2.2 实验仪器 | 第67页 |
3.3 实验方法 | 第67-72页 |
3.3.1 金纳米棒Au NRs的合成 | 第67页 |
3.3.2 天然多糖的改性 | 第67-68页 |
3.3.2.1 葡聚糖dextran的改性 | 第67-68页 |
3.3.2.2 普鲁兰pullulan的改性 | 第68页 |
3.3.3 Au@PSa的合成 | 第68-69页 |
3.3.3.1 Au@Dextran的合成 | 第68页 |
3.3.3.2 Au@Pullulan的合成 | 第68-69页 |
3.3.4 Au@PSa的表征 | 第69页 |
3.3.5 Au@PSa的的体外降解实验 | 第69页 |
3.3.6 细胞毒性实验 | 第69页 |
3.3.7 体外抗肿瘤实验 | 第69-70页 |
3.3.8 ICP-MS测试 | 第70页 |
3.3.9 吞噬效率测试 | 第70页 |
3.3.10 生物透射电镜测试 | 第70页 |
3.3.11 CD-PGEA的制备 | 第70-71页 |
3.3.12 Au@PSa-PGEA的制备 | 第71页 |
3.3.13 琼脂糖凝胶电泳阻滞实验 | 第71页 |
3.3.14 粒径和电位测试 | 第71页 |
3.3.15 转染效率测试 | 第71-72页 |
3.4 结果与讨论 | 第72-86页 |
3.4.1 Au@PSa的制备与表征 | 第72-78页 |
3.4.1.1 核磁谱图分析 | 第72-74页 |
3.4.1.2 Au@PSa的形貌表征 | 第74-75页 |
3.4.1.3 Au@PSa的光热性能表征 | 第75-78页 |
3.4.2 Au@PSa的体外降解测试 | 第78-79页 |
3.4.3 毒性实验 | 第79页 |
3.4.4 体外治疗实验 | 第79-81页 |
3.4.5 多糖的靶向性研究实验 | 第81-82页 |
3.4.6 Au@PSa用作基因载体 | 第82-86页 |
3.5 本章小结 | 第86-87页 |
第四章 总结与展望 | 第87-89页 |
参考文献 | 第89-103页 |
致谢 | 第103-105页 |
研究成果及发表的学术论文 | 第105-107页 |
导师简介 | 第107页 |
作者简介 | 第107-108页 |
附件 | 第108-109页 |