| 中文摘要 | 第1-5页 |
| 英文摘要 | 第5-11页 |
| 1. 前言 | 第11-13页 |
| 2. 材料和方法 | 第13-22页 |
| ·实验动物 | 第13页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第13-14页 |
| ·主要试剂 | 第13-14页 |
| ·主要仪器 | 第14页 |
| ·实验方法 | 第14-21页 |
| ·实验动物分组 | 第14-15页 |
| ·动物模型建立 | 第15-17页 |
| ·脑匀浆标本制备 | 第17页 |
| ·电镜标本制备 | 第17页 |
| ·Nissl染色及免疫组化切片标本制备 | 第17-18页 |
| ·大鼠海马组织总RNA的提取 | 第18页 |
| ·脑组织蛋白测定 | 第18页 |
| ·脑组织SOD活力测定 | 第18-19页 |
| ·脑组织MDA浓度测定 | 第19页 |
| ·脑组织CAT活力测定 | 第19页 |
| ·Nissl染色 | 第19页 |
| ·免疫组织化学染色 | 第19-20页 |
| ·RT-PCR检测 Bax、bcl-2 mRNA表达 | 第20页 |
| ·质量检测 | 第20-21页 |
| ·统计学分析 | 第21-22页 |
| 3. 实验结果 | 第22-29页 |
| ·脑组织匀浆SOD活力 | 第22页 |
| ·脑组织匀浆CAT活力 | 第22-23页 |
| ·脑组织匀浆 MDA含量 | 第23-24页 |
| ·SD大鼠海马CA1区Nissl染色形态学观察 | 第24页 |
| ·电镜下海马锥体细胞线粒体结构形态学观察 | 第24-25页 |
| ·海马CA1区Bax免疫组织化学染色 | 第25页 |
| ·海马CA1区bel-2免疫组织化学染色 | 第25-26页 |
| ·大鼠海马Bax mRNA RT-PCR检测 | 第26-27页 |
| ·大鼠海马bel-2 mRNA RT-PCR检测 | 第27-29页 |
| 4. 讨论 | 第29-36页 |
| ·SD大鼠全脑缺血结合蛛网膜下腔置管模型的构建 | 第29-30页 |
| ·HWTX-I与氧自由基的关系 | 第30-32页 |
| ·HWTX-I对全脑缺血大鼠海马CA1区锥体细胞分布及线粒体形态结构的影响 | 第32-33页 |
| ·HWTX-I对全脑缺血大鼠海马 Bax、bcl-2 mRNA及蛋白表达的影响 | 第33-34页 |
| ·有待进一步研究的问题 | 第34-36页 |
| 5. 结论 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-40页 |
| 综述 | 第40-50页 |
| 缩略词表 | 第50-51页 |
| 附录 | 第51-54页 |
| 科研情况 | 第54-55页 |
| 后记 | 第55-56页 |
| 湖南师范大学学位论文原创性声明 | 第56页 |
| 湖南师范大学学位论文版权使用授权书 | 第56页 |
