| 中文摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 中英文缩略语对照表 | 第11-14页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 研究现状、成果 | 第14-15页 |
| 研究目的、方法 | 第15-17页 |
| 材料和方法 | 第17-35页 |
| 1 材料 | 第17-20页 |
| ·实验动物 | 第17页 |
| ·主要试剂及试剂盒 | 第17-18页 |
| ·溶液配制 | 第18-19页 |
| ·主要仪器 | 第19-20页 |
| 2 动物分组及技术路线 | 第20-21页 |
| 3 有创血流动力学检查 | 第21页 |
| 4 动物组织的取材与处理 | 第21-23页 |
| ·取材与固定 | 第21页 |
| ·脱水、透明与浸蜡 | 第21-22页 |
| ·包埋与修块 | 第22页 |
| ·载玻片的清洗与挂胶 | 第22页 |
| ·切片 | 第22-23页 |
| 5 病理实验 | 第23-29页 |
| ·podoplanin免疫组织化学染色 | 第23-24页 |
| ·LYVE-1免疫组织化学染色 | 第24页 |
| ·vWF免疫组织化学染色 | 第24-25页 |
| ·CD68免疫组织化学染色 | 第25-26页 |
| ·8-OHdG免疫组织化学染色 | 第26-27页 |
| ·TUNEL试剂盒检测细胞凋亡 | 第27-28页 |
| ·病理图像分析 | 第28-29页 |
| 6 组织氧化应激的标志物丙二醛(MDA)含量检测 | 第29-30页 |
| ·组织匀浆 | 第29页 |
| ·ELISA法检测MDA含量 | 第29-30页 |
| 7 荧光定量PCR法检测大鼠心脏组织LYVE-1、podoplanin、TonEBP、VEGF-C、Prox-1的mRNA表达情况 | 第30-34页 |
| ·TRIzol法提取大鼠心脏组织的总RNA | 第30-31页 |
| ·使用核酸定量仪对总RNA进行初步定量 | 第31-32页 |
| ·逆转录合成cDNA第一链 | 第32页 |
| ·荧光定量PCR法对大鼠心脏组织LYVE-1、podoplanin、TonEBP、VEGF-C、Prox-1及的mRNA表达进行相对定量 | 第32-34页 |
| 8 统计学方法 | 第34-35页 |
| 结果 | 第35-50页 |
| 1 血流动力学分析心脏功能 | 第35页 |
| 2 氧化应激、DNA损伤和细胞凋亡 | 第35-38页 |
| 3 巨噬细胞和淋巴管相关病理学分析 | 第38-43页 |
| ·淋巴管的分布和形态学改变 | 第38-39页 |
| ·血管和巨噬细胞的分布及改变 | 第39-43页 |
| 4 大鼠心室组织LYVE-1、podoplanin、Prox-1、TonEBP、VEGF-C的mRNA表达水平分析 | 第43-50页 |
| ·荧光定量PCR产物的溶解曲线分析 | 第43-45页 |
| ·各组大鼠心室组织LYVE-1、podoplanin、Prox-1的mRNA表达水平分析 | 第45-47页 |
| ·各组大鼠心室组织TonEBP、VEGF-C的mRNA表达水平分析 | 第47-50页 |
| 讨论 | 第50-56页 |
| 1 高盐与心肌纤维化 | 第50-51页 |
| 2 高盐与氧化应激和细胞凋亡 | 第51-52页 |
| 3 高盐与MPS/TonEBP/VEGF-C介导的淋巴管增生反应 | 第52-56页 |
| 局限性和研究展望 | 第56-57页 |
| 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-65页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第65-66页 |
| 综述 心脏淋巴脉管系统在高血压性心脏病发病机制中的研究进展 | 第66-84页 |
| 综述参考文献 | 第76-84页 |
| 致谢 | 第84页 |
