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斗南苹果自交不亲和基因型的研究

1 引言第1-14页
 1.1 S糖蛋白的特点第9-10页
 1.2 果树自交不亲和性的研究进展第10-14页
2 材料与方法第14-22页
 2.1 供试材料及设计第14-15页
  2.1.1 植物材料第14页
  2.1.2 酶、试剂第14页
  2.1.3 主要仪器第14页
  2.1.4 PCR引物第14-15页
 2.2 试验方法第15-22页
  2.2.1 花粉发芽率的测定方法第15页
  2.2.2 花柱半离体培养第15-16页
  2.2.3 基因组 DNA的提取方法第16-17页
  2.2.4 基因组 DNA的纯化第17页
  2.2.5 DNA纯度和浓度测定第17页
  2.2.6 苹果 S基因的 PCR扩增第17-19页
  2.2.7 目的片断的回收第19-20页
  2.2.8 苹果 S基因 PCR-RFLP系统检测第20-22页
3 结果与分析第22-34页
 3.1 花柱半离体培养法鉴定斗南苹果 S基因型第22-23页
  3.1.1 不同苹果品种花粉萌发率的调查第22页
  3.1.2 不同品种授粉后花柱内花粉管的生长情况第22-23页
 3.2 苹果基因组 DNA提取技术第23-26页
  3.2.1 不同提取方法对苹果基因组 DNA提取的影响第23-24页
  3.2.2 不同组织试材对提取基因组 DNA的影响第24-25页
  3.2.3 采用嫩叶为试材用改良CTAB法提取基因组 DNA第25-26页
 3.3 S-等位基因PCR扩增最佳反应体系的建立第26-30页
  3.3.1 不同DNA模板含量对苹果 S基因的 PCR扩增的影响第26-27页
  3.3.2 不同Mg~(2+)浓度对苹果S基因的 PCR扩增的影响第27页
  3.3.3 不同dNTP浓度对苹果 S基因的 PCR扩增的影响第27-28页
  3.3.4 不同引物浓度对苹果 S基因的 PCR扩增的影响第28页
  3.3.5 不同Taq聚合酶浓度对苹果 S基因的 PCR扩增的影响第28-29页
  3.3.6 不同buffer浓度对苹果 S基因的 PCR扩增的影响第29页
  3.3.7 不同退火温度对苹果 S基因的 PCR扩增的影响第29-30页
  3.3.8 苹果 S基因最佳 PCR反应体系的建立第30页
 3.4 苹果 S基因的分离与鉴定第30-34页
  3.4.1 苹果 S基因的分离第30-31页
  3.4.2 S_1基因和S_9基因的扩增和回收第31-32页
  3.4.3 S_1基因和S_9基因的酶切检测第32页
  3.4.4 斗南苹果S基因的分离第32-34页
4 讨论第34-37页
5 结论第37-38页
参考文献第38-44页
在校期间发表学术论文第44-45页
作者简历第45-46页
致谢第46-47页
附录第47-53页

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