可控酶解从海洋鱼蛋白中制备生物活性肽的研究
| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 英文摘要 | 第7-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-46页 |
| ·引言 | 第15-16页 |
| ·生物活性肽的生物学意义及食品加工性能 | 第16-26页 |
| ·生物活性肽的生物学意义 | 第16-22页 |
| ·生物活性肽的食品加工功能特性 | 第22-26页 |
| ·生物活性肽的制备方法 | 第26-30页 |
| ·直接提取分离法制备生物活性肽 | 第27-28页 |
| ·合成法制备生物活性肽 | 第28-29页 |
| ·可控酶解蛋白质制备生物活性肽 | 第29-30页 |
| ·可控酶解蛋白质制备生物活性肽的研究进展 | 第30-40页 |
| ·国外的研究发展状况 | 第30-35页 |
| ·国内蛋白质酶降解方法制备生物活性肽的研究进展 | 第35-36页 |
| ·可控酶解海洋鱼蛋白制备生物活性肽研究进展 | 第36-40页 |
| ·生物活性肽的分离纯化技术 | 第40-41页 |
| ·膜分离技术 | 第40-41页 |
| ·离子交换树脂分离技术 | 第41页 |
| ·本研究课题的立项背景、研究意义和主要研究内容 | 第41-46页 |
| ·立项背景和研究意义 | 第41-43页 |
| ·应用前景 | 第43-44页 |
| ·主要研究内容 | 第44-45页 |
| ·研究路线 | 第45-46页 |
| 第二章 可控酶解鱼蛋白工艺优化研究 | 第46-88页 |
| ·引言 | 第46-47页 |
| ·材料与方法 | 第47-49页 |
| ·主要材料与试剂 | 第47-48页 |
| ·主要仪器 | 第48页 |
| ·实验分析方法 | 第48-49页 |
| ·结果与讨论 | 第49-86页 |
| ·原料鱼蛋白分析 | 第49-50页 |
| ·pH值对可控酶解的影响研究 | 第50-53页 |
| ·不同蛋白酶的可控酶解效果的对比 | 第53-58页 |
| ·水解时间对可控酶解的影响 | 第58-67页 |
| ·底物对可控酶解的影响研究 | 第67-76页 |
| ·温度对可控酶解的影响 | 第76-80页 |
| ·酶的用量对可控酶解的影响 | 第80-83页 |
| ·水解搅拌方式对可控酶解的影响研究 | 第83-86页 |
| ·本章小结 | 第86-88页 |
| 第三章 鱼蛋白可控酶解动力学模型的研究 | 第88-101页 |
| ·引言 | 第88页 |
| ·材料与方法 | 第88-89页 |
| ·主要材料与试剂 | 第88-89页 |
| ·主要仪器 | 第89页 |
| ·水解度测定方法 | 第89页 |
| ·结果与讨论 | 第89-100页 |
| ·动力学模型的推导 | 第89-94页 |
| ·动力学模型的参数确定 | 第94-98页 |
| ·蛋白酶失活的常数确定 | 第98-99页 |
| ·可控酶解的动力学模型验证 | 第99-100页 |
| ·本章小结 | 第100-101页 |
| 第四章 生物活性肽的分离技术研究 | 第101-124页 |
| ·引言 | 第101页 |
| ·超滤法分离肽类组分 | 第101-111页 |
| ·前言 | 第101-102页 |
| ·材料与方法 | 第102-104页 |
| ·结果与讨论 | 第104-111页 |
| ·离子交换法分离肽类组分的研究 | 第111-122页 |
| ·前言 | 第111-112页 |
| ·材料和方法 | 第112-113页 |
| ·结果与讨论 | 第113-122页 |
| ·本章小结 | 第122-124页 |
| 第五章 生物活性肽抗疲劳活性研究 | 第124-133页 |
| ·前言 | 第124-126页 |
| ·疲劳的定义及其产生机理 | 第124页 |
| ·抗疲劳的意义 | 第124-125页 |
| ·抗疲劳活性的评价方法 | 第125-126页 |
| ·材料与方法 | 第126-127页 |
| ·实验材料 | 第126页 |
| ·实验方法 | 第126-127页 |
| ·结果与分析 | 第127-131页 |
| ·活性肽对小白鼠游泳时间的影响 | 第127-128页 |
| ·活性肽对小白鼠肝糖原的影响 | 第128-130页 |
| ·活性肽对小白鼠血尿素氮的影响 | 第130-131页 |
| ·本章小结 | 第131-133页 |
| 结论与展望 | 第133-137页 |
| 参考文献 | 第137-149页 |
| 攻读博士学位期间发表论文情况 | 第149-150页 |
| 致谢 | 第150页 |
