| 目录 | 第1-5页 |
| 缩略语及符号 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| 英文摘要 | 第10-13页 |
| (一)、前言 | 第13-17页 |
| (二)、材料和方法 | 第17-29页 |
| 1. 免疫荧光组织化学 | 第17-18页 |
| ·大鼠神经节细胞的逆行标记 | 第17页 |
| ·免疫组织化学用标本的制备 | 第17-18页 |
| ·免疫荧光组织化学反应 | 第18页 |
| ·共聚焦激光扫描显微镜观察 | 第18页 |
| 2. Western blot分析 | 第18-20页 |
| ·实验步骤 | 第18-19页 |
| ·σR1在视网膜细胞质和细胞核中的亚细胞定位分析 | 第19-20页 |
| 3. 大鼠视网膜薄片标本的膜片钳记录 | 第20-24页 |
| ·大鼠视网膜薄片标本的制备 | 第20-21页 |
| ·视网膜薄片标本膜片钳记录的实验装置 | 第21-24页 |
| ·灌流和加药系统 | 第21-22页 |
| ·成像系统 | 第22页 |
| ·记录系统 | 第22-24页 |
| 4. 溶液与药品 | 第24-25页 |
| ·常规溶液 | 第24-25页 |
| ·细胞外液 | 第24页 |
| ·电极内液 | 第24-25页 |
| ·实验中所用的工具药配置 | 第25页 |
| 5. 数据处理 | 第25-29页 |
| (三)、实验结果 | 第29-52页 |
| 1、σR1在大鼠视网膜GC上的分布 | 第29-31页 |
| ·σR1抗体特异性分析 | 第29页 |
| ·σR1在大鼠视网膜神经元上的分布 | 第29-30页 |
| ·σR1在视网膜GC上的分布 | 第30-31页 |
| 2、σR1在大鼠视网膜中的亚细胞分布 | 第31-32页 |
| 3、大鼠视网膜GC亚型的电生理学鉴定 | 第32-33页 |
| 4、大鼠GC上NMDA受体介导电流的鉴定 | 第33-35页 |
| 5、σR1的激活对NMDA电流的影响 | 第35-37页 |
| ·σR1的激活压抑NMDA电流 | 第35-37页 |
| ·σR1激活对NMDA电流的压抑效应具有浓度依赖性 | 第37页 |
| 6、σR1压抑NMDA电流的胞内机制 | 第37-47页 |
| ·G蛋白参与SKF抑制NMDA电流 | 第37-39页 |
| ·磷酸酯酶C通路对SKF抑制NMDA电流的影响 | 第39-40页 |
| ·胞内钙离子对SKF抑制NMDA电流的影响 | 第40-41页 |
| ·胞内钙库对SKF抑制NMDA电流的影响 | 第41-44页 |
| ·IP3受体介导的胞内钙库释放的作用 | 第42-43页 |
| ·Ryanodine受体介导的胞内钙库释放的作用 | 第43-44页 |
| ·PKC通路对SKF抑制NMDA电流的影响 | 第44-45页 |
| ·PKA和PKG通路对SKF抑制NMDA电流的影响 | 第45-47页 |
| 7、σR1的激活对NMDA受体介导光反应的调节 | 第47-50页 |
| 8、σR1的激活对AMPA受体介导的微小兴奋性突触后电流的影响 | 第50-52页 |
| (四)、讨论 | 第52-59页 |
| 1、σR1在大鼠视网膜GC上表达 | 第52-53页 |
| 2、σR1激活压抑NMDA受体 | 第53-54页 |
| 3、σR1激活对NMDA受体压抑的胞内机制 | 第54-57页 |
| 4、σR1在视网膜中可能的生理作用 | 第57-59页 |
| (五)、总结 | 第59-61页 |
| (六)、参考文献 | 第61-74页 |
| 其它研究工作 | 第74-82页 |
| 参考文献 | 第80-82页 |
| 综述 | 第82-105页 |
| 参考文献 | 第94-105页 |
| 后记 | 第105-108页 |
| 1、学习期间完成的论文和摘要 | 第105-106页 |
| 2、致谢 | 第106-108页 |
