| 第一部分 Y药的抗炎药效与作用机制研究 | 第10-62页 |
| 摘要 | 第11-13页 |
| Abstract | 第13-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-23页 |
| 1.1 炎症概述 | 第15页 |
| 1.2 常见炎症模型 | 第15-17页 |
| 1.2.1 常见炎症动物模型 | 第15-16页 |
| 1.2.1.1 非感染性炎症模型 | 第15-16页 |
| 1.2.1.2 感染性炎症模型 | 第16页 |
| 1.2.1.3 变态反应性炎症模型 | 第16页 |
| 1.2.2 常见炎症细胞模型 | 第16-17页 |
| 1.2.2.1 LPS诱导下的RAW264.7细胞炎症模型 | 第16-17页 |
| 1.2.2.2 其他细胞炎症模型 | 第17页 |
| 1.3 抗炎作用的相关机理研究 | 第17-19页 |
| 1.3.1 对PGE2合成和释放的影响 | 第17页 |
| 1.3.2 对COX活性的影响 | 第17-18页 |
| 1.3.3 对IL-1β分泌的影响 | 第18页 |
| 1.3.4 对NLRP3炎性小体的影响 | 第18页 |
| 1.3.5 对NF-κB的影响 | 第18-19页 |
| 1.4 课题研究目的与意义 | 第19-21页 |
| 1.4.1 研究目的 | 第19-20页 |
| 1.4.2 研究意义 | 第20-21页 |
| 1.5 课题主要研究内容 | 第21-23页 |
| 1.5.1 Y药抗炎药效研究 | 第21页 |
| 1.5.2 Y药体内抗炎机制研究 | 第21-22页 |
| 1.5.3 Y药体外抗炎机制研究 | 第22页 |
| 1.5.4 Y药抗菌活性研究 | 第22-23页 |
| 第二章 Y药抗炎药效研究 | 第23-32页 |
| 2.1 引言 | 第23页 |
| 2.2 实验材料 | 第23-24页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第23页 |
| 2.2.2 实验药物、试剂及仪器 | 第23-24页 |
| 2.2.3 实验中相关试剂的配制 | 第24页 |
| 2.3 实验内容 | 第24-25页 |
| 2.3.1 毒性实验 | 第24页 |
| 2.3.2 小鼠耳廓肿胀实验 | 第24页 |
| 2.3.3 小鼠腹腔毛细血管通透性增加实验 | 第24-25页 |
| 2.3.4 大鼠足趾肿胀实验 | 第25页 |
| 2.3.5 大鼠棉球肉芽肿实验 | 第25页 |
| 2.3.6 统计学处理 | 第25页 |
| 2.4 结果 | 第25-30页 |
| 2.4.1 Y药急性毒性的影响 | 第25-26页 |
| 2.4.2 Y药对小鼠耳廓肿胀的影响 | 第26-28页 |
| 2.4.3 Y药对小鼠腹腔毛细管通透性增加的影响 | 第28页 |
| 2.4.4 Y药对大鼠足趾肿胀的影响 | 第28-29页 |
| 2.4.5 Y药对大鼠棉球肉芽肿的影响 | 第29-30页 |
| 2.5 讨论 | 第30-32页 |
| 第三章 Y药体内抗炎机制研究 | 第32-41页 |
| 3.1 引言 | 第32页 |
| 3.2 实验材料 | 第32-33页 |
| 3.2.1 实验动物 | 第32页 |
| 3.2.2 实验药物、试剂及仪器 | 第32-33页 |
| 3.2.3 实验中相关试剂的配制 | 第33页 |
| 3.3 实验方法 | 第33-34页 |
| 3.3.1 模型建立 | 第33页 |
| 3.3.2 小鼠肺组织病理变化 | 第33页 |
| 3.3.3 ELISA法检测小鼠血清中PGE2和IL-1β含量变化 | 第33页 |
| 3.3.4 Westernblot法检测小鼠肺组织中COX-2、NLRP3、p65蛋白和磷酸化p65表达情况 | 第33-34页 |
| 3.4 结果 | 第34-39页 |
| 3.4.1 Y药对小鼠肺组织病理变化的影响 | 第34页 |
| 3.4.2 Y药对小鼠血清中PGE2含量的影响 | 第34-36页 |
| 3.4.3 Y药对小鼠血清中IL-1β含量的影响 | 第36-37页 |
| 3.4.4 Y药对小鼠肺组织中COX-2和NLRP3蛋白表达的影响 | 第37-38页 |
| 3.4.5 Y药对小鼠肺组织中p65蛋白和磷酸化p65表达的影响 | 第38-39页 |
| 3.5 讨论 | 第39-41页 |
| 第四章 Y药体外抗炎机制研究 | 第41-49页 |
| 4.1 引言 | 第41页 |
| 4.2 实验材料 | 第41-42页 |
| 4.2.1 实验细胞 | 第41页 |
| 4.2.2 实验药物、试剂及仪器 | 第41-42页 |
| 4.2.3 实验中相关试剂的配制 | 第42页 |
| 4.3 实验方法 | 第42-43页 |
| 4.3.0 RAW264.7细胞的培养 | 第42页 |
| 4.3.1 MTT法检测RAW264.7细胞活性 | 第42页 |
| 4.3.2 Western blot 法检测 LPS 诱导不同时间后细胞中 COX-2、NLRP3、 | 第42-43页 |
| 4.3.3 ELISA 法检测 RAW264.7 细胞上清液中 PGE2和 IL-1β含量水平 | 第43页 |
| 4.3.4 Western blot 法检测 LPS 诱导细胞中 COX-2、NLRP3、p65 蛋白 | 第43页 |
| 4.3.5 统计学处理 | 第43页 |
| 4.4 结果 | 第43-47页 |
| 4.4.1 Y药对RAW264.7细胞活性的影响 | 第43-44页 |
| 4.4.2 诱导时间对RAW264.7细胞中COX-2、NLRP3、p65蛋白和磷酸化p65表达的影响 | 第44-45页 |
| 4.4.3 Y药对RAW264.7细胞中PGE2含量水平的影响 | 第45页 |
| 4.4.4 Y药对RAW264.7细胞中IL-1β分泌水平的影响 | 第45-46页 |
| 4.4.5 Y药对RAW264.7细胞中COX-2、NLRP3、p65蛋白和磷酸化p65表达的影响 | 第46-47页 |
| 4.5 讨论 | 第47-49页 |
| 第五章 Y药抗菌活性研究 | 第49-54页 |
| 5.1 引言 | 第49页 |
| 5.2 实验材料 | 第49-50页 |
| 5.2.1 菌株 | 第49页 |
| 5.2.2 实验药物、试剂及仪器 | 第49页 |
| 5.2.3 实验中相关试剂的配制 | 第49-50页 |
| 5.3 实验方法 | 第50-51页 |
| 5.3.1 细菌培养 | 第50页 |
| 5.3.2 菌液稀释 | 第50页 |
| 5.3.3 抑菌圈大小的测定 | 第50页 |
| 5.3.4 最小抑菌浓度(MIC)的测定 | 第50页 |
| 5.3.5 细菌生长曲线的绘制 | 第50页 |
| 5.3.6 统计学处理 | 第50-51页 |
| 5.4 结果 | 第51-53页 |
| 5.4.1 Y药对细菌抑菌圈大小的影响 | 第51-52页 |
| 5.4.2 MIC的测定结果 | 第52页 |
| 5.4.3 生长曲线的测定 | 第52-53页 |
| 5.5 讨论 | 第53-54页 |
| 第六章 结论和展望 | 第54-56页 |
| 6.1 结论 | 第54-55页 |
| 6.1.1 药效学研究 | 第54页 |
| 6.1.2 体内抗炎机制研究 | 第54页 |
| 6.1.3 体外抗炎机制研究 | 第54-55页 |
| 6.1.4 体外抗菌活性研究 | 第55页 |
| 6.2 展望 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-62页 |
| 第二部分 莲心总碱对 LPS/GalN 诱导急性肝衰竭 | 第62-82页 |
| 摘要 | 第63-64页 |
| Abstract | 第64-65页 |
| 第一章 莲心总碱对急性肝衰竭小鼠肝脏氧化应激的影响 | 第65-71页 |
| 1.1 引言 | 第65页 |
| 1.2 实验材料 | 第65页 |
| 1.2.1 实验动物 | 第65页 |
| 1.2.2 实验药物、试剂及仪器 | 第65页 |
| 1.2.3 实验中相关试剂的配制 | 第65页 |
| 1.3 实验方法 | 第65-66页 |
| 1.3.1 模型建立 | 第65-66页 |
| 1.3.2 小鼠肝组织病理变化 | 第66页 |
| 1.3.3 ELISA法检测小鼠血清中ALT、AST、MDA、GSH和SOD的含量,肝组织中MDA、GSH、SOD、GSH-Px和CAT含量 | 第66页 |
| 1.3.4 肝脏ROS相对含量测定 | 第66页 |
| 1.3.5 统计学分析 | 第66页 |
| 1.4 结果 | 第66-69页 |
| 1.4.1 TAENN对ALF小鼠生存率的影响 | 第66-67页 |
| 1.4.2 TAENN对小鼠肝脏组织病理变化的影响 | 第67页 |
| 1.4.3 TAENN对ALF小鼠肝脏指数及血清中ALT和AST的影响 | 第67-68页 |
| 1.4.4 TAENN对ALF小鼠血清中MDA、GSH和SOD含量水平的影响 | 第68页 |
| 1.4.5 TAENN对ALF小鼠肝脏中MDA、GSH和ROS含量变化的影响 | 第68-69页 |
| 1.4.6 TAENN对ALF小鼠肝组织中SOD、CAT和GSH-Px活性的影响 | 第69页 |
| 1.5 讨论 | 第69-71页 |
| 第二章 莲心总碱对急性肝衰竭小鼠肝脏炎症反应的影响 | 第71-78页 |
| 2.1 引言 | 第71页 |
| 2.2 实验材料 | 第71页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第71页 |
| 2.2.2 实验药物、试剂及仪器 | 第71页 |
| 2.2.3 实验中相关试剂的配制 | 第71页 |
| 2.3 实验方法 | 第71-73页 |
| 2.3.1 模型建立 | 第71-72页 |
| 2.3.2 ELISA法检测小鼠血清中TNF-α、IL-1β和IL-6的含量,肝组织中TNF-α、IL-1β、IL-6、PGE2和NO的含量 | 第72页 |
| 2.3.3 qt-PCR测定肝组织中TNF-α、IL-1β、IL-6、iNOS和COX-2mRNA的表达 | 第72页 |
| 2.3.4 Westernblot法检测小鼠肝组织中iNOS、COX-2、p65蛋白和磷酸化p65表达 | 第72页 |
| 2.3.5 数据处理 | 第72-73页 |
| 2.4 结果与分析 | 第73-77页 |
| 2.4.1 TAENN对ALF小鼠血清中TNF-α、IL-1β和IL-6含量的影响 | 第73页 |
| 2.4.2 TAENN对ALF小鼠肝脏中TNF-α、IL-1β和IL-6含量的影响 | 第73-74页 |
| 2.4.3 TAENN对ALF小鼠肝脏中TNF-α、IL-1β和IL-6mRNA表达的影响 | 第74页 |
| 2.4.4 TAENN对ALF小鼠肝脏中炎症介质和NF-κB信号通路的影响 | 第74-76页 |
| 2.4.5 TAENN对ALF小鼠肝脏中NO、PGE2含量的影响 | 第76页 |
| 2.4.6 TAENN对ALF小鼠肝脏中iNOS、COX-2mRNA和蛋白表达的影响 | 第76-77页 |
| 2.5 讨论 | 第77-78页 |
| 第三章 结论和展望 | 第78-79页 |
| 3.1 总结 | 第78页 |
| 3.2 展望 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-82页 |
| 附录A 攻读学位期间所发表的学术论文目录 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83页 |
