摘要 | 第8-10页 |
Abstract | 第10-11页 |
第1章 绪论 | 第13-22页 |
1.1 前言 | 第13页 |
1.2 T2DM概述 | 第13-17页 |
1.2.1 糖尿病简介 | 第13-14页 |
1.2.2 T2DM发病机制 | 第14-15页 |
1.2.3 葡萄糖摄取的机制研究 | 第15-16页 |
1.2.4 T2DM的治疗现状 | 第16-17页 |
1.3 榼藤子简介 | 第17-20页 |
1.3.1 榼藤子形态及分布 | 第17-18页 |
1.3.2 榼藤子化学成分研究概述 | 第18-19页 |
1.3.3 榼藤子药理活性研究概述 | 第19-20页 |
1.4 榼藤子酸概述 | 第20-21页 |
1.4.1 榼藤子酸药理活性研究进展 | 第20页 |
1.4.2 榼藤子酸提取分离现状 | 第20-21页 |
1.5 本研究的目的与意义 | 第21-22页 |
第2章 榼藤子酸的提取分离 | 第22-26页 |
2.1 前言 | 第22页 |
2.2 实验材料与仪器 | 第22-23页 |
2.2.1 试剂与仪器 | 第22页 |
2.2.2 材料 | 第22-23页 |
2.3 提取与分离流程 | 第23-25页 |
2.3.1 榼藤子总皂苷的制备 | 第23页 |
2.3.2 榼藤子总皂苷的酸水解及分离纯化 | 第23-25页 |
2.4 结论 | 第25-26页 |
第3章 榼藤子酸对L6细胞和HepG2细胞葡萄糖消耗的影响 | 第26-37页 |
3.1 前言 | 第26页 |
3.2 实验材料 | 第26-28页 |
3.2.1 细胞株 | 第26-27页 |
3.2.2 实验仪器 | 第27页 |
3.2.3 主要试剂及耗材 | 第27页 |
3.2.4 试剂的配制 | 第27-28页 |
3.2.5 实验药品及配制 | 第28页 |
3.3 实验方法 | 第28-31页 |
3.3.1 细胞培养 | 第28页 |
3.3.2 细胞传代 | 第28-29页 |
3.3.3 L6细胞分化 | 第29页 |
3.3.4 细胞冻存与复苏 | 第29页 |
3.3.5 MTT法测定EA细胞毒性 | 第29-30页 |
3.3.6 HepG2胰岛素抵抗细胞葡萄糖消耗实验 | 第30页 |
3.3.7 L6成肌细胞葡萄糖消耗实验 | 第30-31页 |
3.4 统计学分析 | 第31页 |
3.5 实验结果 | 第31-34页 |
3.5.1 EA对胰岛素抵抗HepG2细胞葡萄糖消耗的影响 | 第31页 |
3.5.2 EA对L6成肌细胞葡萄糖消耗的影响 | 第31-33页 |
3.5.3 EA同系化合物对葡萄糖消耗的对比研究 | 第33-34页 |
3.6 实验讨论 | 第34-36页 |
3.7 实验小结 | 第36-37页 |
第4章 榼藤子酸促进葡萄糖消耗的机制研究 | 第37-47页 |
4.1 前言 | 第37-38页 |
4.2 实验材料 | 第38-40页 |
4.2.1 细胞株 | 第38页 |
4.2.2 主要试剂及耗材 | 第38-39页 |
4.2.3 实验仪器 | 第39页 |
4.2.4 溶液的配制 | 第39-40页 |
4.3 实验方法 | 第40-42页 |
4.3.1 EA对IRAP转膜的影响 | 第40页 |
4.3.2 Western blotting检测GLUT4蛋白、AKT、AMPK、ACC蛋白及其磷酸化水平 | 第40-42页 |
4.4 统计学分析 | 第42页 |
4.5 结果 | 第42-46页 |
4.5.1 EA对IRAP转位的影响 | 第42-43页 |
4.5.2 EA对GLUT4蛋白表达的影响 | 第43-44页 |
4.5.3 EA对Akt、AMPK磷酸化的影响蛋白表达的影响 | 第44-45页 |
4.5.4 EA对AMPK信号通路AMPK、ACC磷酸化的影响 | 第45-46页 |
4.6 讨论与小结 | 第46-47页 |
第5章 榼藤子酸对db/db模型小鼠体内降糖活性研究 | 第47-66页 |
5.1 前言 | 第47-48页 |
5.2 实验材料 | 第48-49页 |
5.2.1 主要仪器 | 第48页 |
5.2.2 主要试剂 | 第48-49页 |
5.2.3 实验动物 | 第49页 |
5.3 实验方法 | 第49-51页 |
5.3.1 药物的配制 | 第49页 |
5.3.2 动物分组和给药 | 第49页 |
5.3.3 体重、进水、进食量及餐后血糖值监测 | 第49-50页 |
5.3.4 腹腔注射葡萄糖耐量试验(Intraperitoneal Glucose ToleranceTest,IPGTT) | 第50页 |
5.3.5 腹腔注射胰岛素耐量实验(Intraperitoneal Insulin Tolerance Test,IPITT) | 第50页 |
5.3.6 血清中生化指标的分析 | 第50页 |
5.3.7 肝脏中MDA、SOD水平的测定 | 第50页 |
5.3.8 组织病理学分析 | 第50-51页 |
5.3.9 Western blotting检测肌肉组织GLUT4蛋白表达 | 第51页 |
5.4 统计学分析 | 第51-52页 |
5.5 结果 | 第52-62页 |
5.5.1 EA对db/db小鼠体重、进水、进食量的影响 | 第52-55页 |
5.5.2 EA对db/db小鼠血糖值的影响 | 第55-56页 |
5.5.3 EA对IPGTT和IPITT及血清胰岛素水平的影响 | 第56-57页 |
5.5.4 EA对db/db小鼠脂质代谢紊乱的改善作用 | 第57-59页 |
5.5.5 EA对db/db小鼠氧化应激和微炎症状态的改善作用 | 第59-60页 |
5.5.6 EA对db/db小鼠胰腺组织病理学的影响 | 第60-61页 |
5.5.7 EA对db/db小鼠肌肉组织中GLUT4蛋白表达的影响 | 第61-62页 |
5.6 实验讨论 | 第62-63页 |
5.7 实验小结 | 第63-66页 |
结论 | 第66-67页 |
本研究工作的创新点 | 第67-69页 |
参考文献 | 第69-76页 |
致谢 | 第76-78页 |
附录A:攻读学位期间发表的学术论文 | 第78-80页 |
附录B:中英文对照缩略词表 | 第80-81页 |