| 摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3-4页 |
| 引言 | 第8-9页 |
| 1 绪论 | 第9-24页 |
| 1.1 金属纳米簇概述 | 第9-10页 |
| 1.2 荧光贵金属纳米簇 | 第10-13页 |
| 1.3 荧光铜纳米簇 | 第13-17页 |
| 1.4 金属纳米簇的应用 | 第17-22页 |
| 1.4.1 金属离子检测 | 第17-18页 |
| 1.4.2 生物小分子检测 | 第18-20页 |
| 1.4.3 蛋白质检测 | 第20-21页 |
| 1.4.4 核酸检测 | 第21页 |
| 1.4.5 生物成像 | 第21-22页 |
| 1.5 本论文的研究内容及意义 | 第22-24页 |
| 2 基于胸腺嘧啶快速合成水溶性、黄色荧光的铜纳米簇 | 第24-40页 |
| 2.1 实验部分 | 第25-27页 |
| 2.1.1 实验试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第26页 |
| 2.1.3 Cu NCs的表征 | 第26页 |
| 2.1.4 Cu NCs@T的合成 | 第26-27页 |
| 2.2 Cu NCs@T的合成条件的优化 | 第27-32页 |
| 2.2.1 pH对Cu NCs@T荧光强度的影响 | 第27-28页 |
| 2.2.2 CuSO_4/T与CuSO_4/NH_2OH·HCl的摩尔比对Cu NCs@T荧光强度的影响 | 第28-29页 |
| 2.2.3 反应时间对Cu NCs@T荧光强度的影响 | 第29-30页 |
| 2.2.4 对照实验 | 第30-32页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第32-38页 |
| 2.3.1 紫外吸收光谱 | 第32-33页 |
| 2.3.2 静态及动态荧光光谱 | 第33-35页 |
| 2.3.3 透射电子显微镜（TEM）表征 | 第35-36页 |
| 2.3.4 傅里叶变换红外光谱（FT-IR）表征 | 第36页 |
| 2.3.5 X射线光电子能谱（XPS）表征 | 第36-37页 |
| 2.3.6 Cu NCs@T的稳定性考察 | 第37-38页 |
| 2.4 本章小结 | 第38-40页 |
| 3 Cu NCs@T荧光生物传感用于“turn-off”检测葡萄糖与尿酸 | 第40-51页 |
| 3.1 实验部分 | 第41-42页 |
| 3.1.1 实验试剂 | 第41页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第41页 |
| 3.1.3 合成以胸腺嘧啶为模板的铜纳米簇 | 第41-42页 |
| 3.1.4 传感器的制备 | 第42页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第42-50页 |
| 3.2.1“turn-off”检测葡萄糖/尿酸的基本原理 | 第42-43页 |
| 3.2.2 传感器条件优化和测定过氧化氢 | 第43-45页 |
| 3.2.3 检测葡萄糖 | 第45-47页 |
| 3.2.4 检测尿酸 | 第47-50页 |
| 3.2.5 猝灭机理的探讨 | 第50页 |
| 3.3 本章小结 | 第50-51页 |
| 4 Cu NCs@T荧光传感“turn-on”特异检测Mn~(2+) | 第51-60页 |
| 4.1 实验部分 | 第52-53页 |
| 4.1.1 实验试剂 | 第52页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第52页 |
| 4.1.3 Cu NCs@T荧光探针检测Mn~(2+) | 第52-53页 |
| 4.2 传感器机理与条件 | 第53-55页 |
| 4.2.1“turn-on”检测Mn~(2+)的机理 | 第53-54页 |
| 4.2.2 Cu NCs与Mn~(2+)培育时间的优化 | 第54-55页 |
| 4.3 Mn~(2+)的线性范围与检出限 | 第55-56页 |
| 4.4 特异性检测 | 第56-57页 |
| 4.5 Cu NCs@T-Mn~(2+)复合物的优异性质 | 第57-59页 |
| 4.6 Cu NCs@T-Mn~(2+)传感器用于实际样品湖水的检测 | 第59页 |
| 4.7 本章小结 | 第59-60页 |
| 结论 | 第60-61页 |
| 本论文创新点及展望 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-71页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-74页 |
