| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 第一章 绪论 | 第17-53页 |
| 1.1 肿瘤光学治疗 | 第17-19页 |
| 1.1.1 肿瘤光热治疗 | 第18页 |
| 1.1.2 肿瘤光动力治疗 | 第18-19页 |
| 1.2 用于肿瘤光热治疗的有机纳米材料 | 第19-24页 |
| 1.2.1 负载有机小分子染料的纳米胶束 | 第19-21页 |
| 1.2.2 基于共轭高分子的纳米光热试剂 | 第21-22页 |
| 1.2.3 卟啉体纳米囊泡 | 第22-24页 |
| 1.2.4 其他有机纳米材料 | 第24页 |
| 1.3 用于肿瘤光动力治疗的有机纳米材料 | 第24-28页 |
| 1.3.1 基于磷脂分子的光敏剂递送载体 | 第25-26页 |
| 1.3.2 基于聚合物的光敏剂纳米递送载体 | 第26-27页 |
| 1.3.3 基于天然材料的光敏剂纳米递送载体 | 第27-28页 |
| 1.4 光学治疗与其他治疗手段的联合治疗 | 第28-34页 |
| 1.4.1 光热治疗与化疗的联合治疗 | 第29-30页 |
| 1.4.2 光热治疗与光动力的联合治疗 | 第30页 |
| 1.4.3 光动力治疗与化疗的联合治疗 | 第30-32页 |
| 1.4.4 肿瘤微环境调节与肿瘤光学治疗 | 第32-34页 |
| 1.5 本论文选题依据和研究内容 | 第34-36页 |
| 参考文献 | 第36-53页 |
| 第二章 掺杂超小四氧化三铁的聚吡咯纳米复合物在多模态影像导航下的肿瘤光热治疗中的应用 | 第53-76页 |
| 2.1 引言 | 第53-55页 |
| 2.2 实验材料及实验方法 | 第55-58页 |
| 2.2.1 主要实验材料和试剂 | 第55页 |
| 2.2.2 IONP@PPy-PEG纳米复合物的合成 | 第55-56页 |
| 2.2.3 细胞毒性与细胞水平光热治疗 | 第56-57页 |
| 2.2.4 动物模型建立 | 第57页 |
| 2.2.5 IONP@PPy-PEG在小鼠水平的多模态成像研究 | 第57页 |
| 2.2.6 IONP@PPy-PEG在小鼠体内的分布行为研究 | 第57页 |
| 2.2.7 IONP@PPy-PEG在活体水平的光热治疗研究 | 第57-58页 |
| 2.2.8 IONP@PPy-PEG在小鼠水平的长期毒性研究 | 第58页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第58-71页 |
| 2.3.1 IONP@PPy-PEG纳米复合物的制备 | 第58-60页 |
| 2.3.2 IONP@PPy-PEG纳米复合物的表征 | 第60-63页 |
| 2.3.3 细胞毒性与体外光热治疗研究 | 第63-65页 |
| 2.3.4 IONP@PPy-PEG在活体水平的多模态成像 | 第65-67页 |
| 2.3.5 IONP@PPy-PEG在小鼠体内的分布行为 | 第67-68页 |
| 2.3.6 IONP@PPy-PEG在活体水平的肿瘤光热治疗 | 第68-71页 |
| 2.4 本章小结 | 第71页 |
| 参考文献 | 第71-76页 |
| 第三章 光敏剂缀合的蛋白-聚吡咯纳米复合物用于成像导航下的肿瘤光热与光动力联合治疗 | 第76-101页 |
| 3.1 引言 | 第76-77页 |
| 3.2 实验材料及实验方法 | 第77-80页 |
| 3.2.1 主要实验材料和试剂 | 第77-78页 |
| 3.2.2 PPy@BSA的合成 | 第78页 |
| 3.2.3 PPy@BSA-Ce6的合成 | 第78页 |
| 3.2.4 细胞实验 | 第78-79页 |
| 3.2.5 PPy@BSA-Ce6的活体多模态成像研究 | 第79页 |
| 3.2.6 PPy@BSA-Ce6在活体内的血液循环和生物分布研究 | 第79-80页 |
| 3.2.7 PPy@BSA-Ce6在活体水平的联合治疗研究 | 第80页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第80-96页 |
| 3.3.1 PPy@BSA纳米颗粒的制备 | 第80-81页 |
| 3.3.2 PPy@ BSA纳米颗粒的表征 | 第81-83页 |
| 3.3.3 PPy@ BSA-Ce6纳米颗粒的制备 | 第83页 |
| 3.3.4 Py@ BSA-Ce6纳米颗粒的表征 | 第83-86页 |
| 3.3.5 PPy@BSA-Ce6纳米颗粒的细胞吞噬行为 | 第86-87页 |
| 3.3.6 PPy@BSA-Ce6在细胞水平的联合治疗 | 第87-88页 |
| 3.3.7 活体水平的生物行为 | 第88-90页 |
| 3.3.8 PPy@BSA-Ce6(Gd)纳米颗粒的合成 | 第90-91页 |
| 3.3.9 PPy@BSA-Ce6(Gd)纳米复合物的表征 | 第91-92页 |
| 3.3.10 活体水平的磁共振成像 | 第92-93页 |
| 3.3.11 活体水平的联合治疗 | 第93-95页 |
| 3.3.12 组织学检测 | 第95-96页 |
| 3.4 本章小结 | 第96页 |
| 参考文献 | 第96-101页 |
| 第四章 基于IR825的J-型聚集体在磁共振成像导航下的肿瘤光热治疗中的应用 | 第101-125页 |
| 4.1 引言 | 第101-103页 |
| 4.2 实验材料及实验方法 | 第103-106页 |
| 4.2.1 主要实验材料和试剂 | 第103页 |
| 4.2.2 IR825@PAH-IONP-PEG纳米复合物的制备 | 第103-104页 |
| 4.2.3 不同波长激光组织穿透深度比较 | 第104页 |
| 4.2.4 IR825@PAH-IONP-PEG纳米复合物的光稳定性研究 | 第104页 |
| 4.2.5 IR825@PAH-IONP-PEG的细胞毒性研究 | 第104页 |
| 4.2.6 IR825@PAH-IONP-PEG在细胞水平的光热治疗效果研究 | 第104-105页 |
| 4.2.7 小鼠肿瘤模型建立 | 第105页 |
| 4.2.8 IR825@PAH-IONP-PEG在小鼠水平的磁共振成像研究 | 第105页 |
| 4.2.9 IR825@PAH-IONP-PEG在活体水平的光热治疗研究 | 第105-106页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第106-119页 |
| 4.3.1 IR825@PAH-IONP-PEG纳米颗粒的制备 | 第106-107页 |
| 4.3.2 IR825@PAH-IONP-PEG纳米复合物的表征 | 第107-112页 |
| 4.3.3 细胞毒性与细胞水平的光热治疗 | 第112-114页 |
| 4.3.4 IR825@PAH-IONP-PEG磁学性质与活体水平磁共振成像 | 第114-116页 |
| 4.3.5 IR825@PAH-IONP-PEG在小鼠内的生物分布行为 | 第116-118页 |
| 4.3.7 IR825@PAH-IONP-PEG安全性评价 | 第118-119页 |
| 4.4 本章小结 | 第119-120页 |
| 参考文献 | 第120-125页 |
| 第五章 基于IR825的J-型聚集体在肿瘤光热治疗与化疗的联合治疗中的应用 | 第125-151页 |
| 5.1 引言 | 第125-127页 |
| 5.2 实验方法与实验试剂 | 第127-130页 |
| 5.2.1 主要实验材料和试剂 | 第127页 |
| 5.2.2 IR825的合成 | 第127页 |
| 5.2.3 IR825@PEI-PEG纳米颗粒的制备 | 第127-128页 |
| 5.2.4 IR825@PEI-PEG的阿霉素的装载能力研究 | 第128页 |
| 5.2.5 细胞培养 | 第128页 |
| 5.2.6 细胞对IR825@PEI-PEG/DOX的摄取行为研究 | 第128页 |
| 5.2.7 细胞水平的联合治疗 | 第128页 |
| 5.2.8 动物模型的建立 | 第128-129页 |
| 5.2.9 IR825@PEI-PEG/DOX的血液循环研究 | 第129页 |
| 5.2.10 IR825@PEI-PEG/DOX的生物分布研究 | 第129页 |
| 5.2.11 IR825@PEI-PEG/DOX活体水平的光声成像研究 | 第129页 |
| 5.2.12 IR825@PEI-PEG/DOX活体水平的联合治疗 | 第129页 |
| 5.2.13 组织学检测 | 第129-130页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第130-144页 |
| 5.3.1 IR825@PEI-PEG/DOX纳米颗粒的制备 | 第130页 |
| 5.3.2 IR825@PEI-PEG/DOX纳米颗粒的表征 | 第130-137页 |
| 5.3.3 细胞毒性与联合治疗 | 第137-140页 |
| 5.3.4 IR825@PEI-PEG/DOX的血液循环和生物分布行为 | 第140-141页 |
| 5.3.5 IR825@PEI-PEG/DOX在活体水平的光声成像 | 第141-142页 |
| 5.3.6 IR825@PEI-PEG/DOX在活体水平联合治疗 | 第142-143页 |
| 5.3.7 组织学检测 | 第143-144页 |
| 5.4 本章小结 | 第144-145页 |
| 参考文献 | 第145-151页 |
| 第六章 共载二甲双胍和二氢卟吩e6的脂质体用于肿瘤乏氧光动力治疗 | 第151-173页 |
| 6.1 引言 | 第151-152页 |
| 6.2 实验方法与主要试剂 | 第152-155页 |
| 6.2.1 主要试剂 | 第152-153页 |
| 6.2.2 疏水Ce6的合成 | 第153页 |
| 6.2.3 Met-HCe6-Liposome纳米颗粒的制备 | 第153页 |
| 6.2.4 Met-HCe6-Liposome细胞毒性研究 | 第153页 |
| 6.2.5 细胞水平的光动力治疗 | 第153-154页 |
| 6.2.6 Met-HCe6-Liposome血液循环与生物分布研究 | 第154页 |
| 6.2.7 Met-HCe6-Liposome对肿瘤乏氧微环境调节的研究 | 第154-155页 |
| 6.2.8 Met-HCe6-Liposome活体水平光动力治疗研究 | 第155页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第155-168页 |
| 6.3.1 Met-HCe6-liposome的制备 | 第155-156页 |
| 6.3.2 Met-HCe6-Liposome的表征 | 第156-158页 |
| 6.3.3 细胞毒性与光动力治疗 | 第158-160页 |
| 6.3.4 Met-HCe6-Liposome的血液循环与生物分布 | 第160-161页 |
| 6.3.5 4T1肿瘤模型的光声成像以及体外免疫荧光染色 | 第161-164页 |
| 6.3.6 CT-26以及SCC-7肿瘤模型的光声成像以及体外免疫荧光染色 | 第164-165页 |
| 6.3.7 Met-HCe6-Liposome活体水平的光动力治疗 | 第165-168页 |
| 6.4 本章小结 | 第168页 |
| 参考文献 | 第168-173页 |
| 第七章 超声响应性全氟碳纳米乳液用于克服肿瘤乏氧及增强肿瘤治疗 | 第173-198页 |
| 7.1 引言 | 第173-175页 |
| 7.2 实验方法与主要试剂 | 第175-178页 |
| 7.2.1 主要实验材料和试剂 | 第175页 |
| 7.2.2 全氟碳纳米乳液的制备 | 第175页 |
| 7.2.3 疏水二氢卟吩e6 (HCe6)的合成 | 第175-176页 |
| 7.2.4 装载HCe6的脂质体的制备 | 第176页 |
| 7.2.5 超声触发的氧气释放量的测定 | 第176页 |
| 7.2.6 细胞实验 | 第176页 |
| 7.2.7 全氟碳纳米乳液血液循环的测定 | 第176-177页 |
| 7.2.8 小鼠肿瘤模型的建立 | 第177页 |
| 7.2.9 注射PFC纳米乳液对肿瘤乏氧改善的研究 | 第177页 |
| 7.2.10 肿瘤乏氧改善对光动力治疗和放射治疗疗效影响的研究 | 第177-178页 |
| 7.3 结果与讨论 | 第178-192页 |
| 7.3.1 全氟碳纳米乳液的制备和表征 | 第178-180页 |
| 7.3.2 PFC纳米乳液的血液循环及改善肿瘤乏氧状况的示意图 | 第180-181页 |
| 7.3.3 体内光声成像与离体免疫荧光染色 | 第181-184页 |
| 7.3.4 活体水平的光动力治疗 | 第184-188页 |
| 7.3.5 活体水平的放射治疗 | 第188-190页 |
| 7.3.6 CT-26肿瘤模型的治疗 | 第190-192页 |
| 7.4 本章小结 | 第192页 |
| 参考文献 | 第192-198页 |
| 第八章 论文总结与展望 | 第198-204页 |
| 8.1 论文总结 | 第198-201页 |
| 8.2 本论文的创新点与不足 | 第201-203页 |
| 8.3 研究展望 | 第203-204页 |
| 缩写目录 | 第204-205页 |
| 攻读学位期间本人出版或公开发表的论著、论文 | 第205-208页 |
| 致谢 | 第208页 |
