| 致谢 | 第4-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| 1 文献综述 | 第10-16页 |
| 1.1 褪黑素及其相关生理活性 | 第10-13页 |
| 1.1.0 褪黑素的合成与代谢 | 第10页 |
| 1.1.1 褪黑素的抗氧化功能 | 第10-11页 |
| 1.1.2 褪黑素对动物昼夜节律地调节功能 | 第11页 |
| 1.1.3 褪黑素的抗肿瘤功能 | 第11-12页 |
| 1.1.4 褪黑素对动物生殖的的影响 | 第12页 |
| 1.1.5 褪黑素对动物免疫的影响 | 第12-13页 |
| 1.1.6 褪黑素对植物的影响 | 第13页 |
| 1.1.7 褪黑素对动物营养生理的影响 | 第13页 |
| 1.2 代谢组学研究 | 第13-14页 |
| 1.2.1 代谢组学的研究现状及定义 | 第13-14页 |
| 1.2.2 代谢组学的研究方法 | 第14页 |
| 1.2.3 NMR代谢组学的特点 | 第14页 |
| 1.2.4 NMR代谢组学的步骤 | 第14页 |
| 1.3 基因芯片技术简介 | 第14-16页 |
| 1.3.1 基因芯片的定义及特点 | 第14-15页 |
| 1.3.5 基因芯片的应用 | 第15-16页 |
| 2 引言 | 第16-17页 |
| 3 方法与材料 | 第17-26页 |
| 3.1 设备与试剂 | 第17-18页 |
| 3.1.1 试验仪器及耗材 | 第17页 |
| 3.1.2 试验主要药品与试剂 | 第17页 |
| 3.1.3 主要试剂的配置 | 第17-18页 |
| 3.2 试验饲料构成及制备方法 | 第18页 |
| 3.3 试验动物的饲养与处理 | 第18-19页 |
| 3.4 样品采集与处理 | 第19页 |
| 3.5 血液指标检测 | 第19页 |
| 3.6 肝脏组织样品油红O染色 | 第19页 |
| 3.7 肝脏组织中主要长链脂肪酸的检测 | 第19-20页 |
| 3.8 肝脏组织代谢组学检测步骤 | 第20-21页 |
| 3.9 肝脏组织基因芯片检测步骤 | 第21-25页 |
| 3.9.1 肝脏组织中总RNA的提取（包含mi RNA） | 第21页 |
| 3.9.2 总RNA纯化 | 第21-22页 |
| 3.9.3 cDNA第一链和第二链一步法合成 | 第22页 |
| 3.9.4 aa‐UTP标记cRNA合成 | 第22页 |
| 3.9.5 cRNA纯化 | 第22-23页 |
| 3.9.6 cRNA浓度测定 | 第23页 |
| 3.9.7 cRNA样品荧光标记 | 第23页 |
| 3.9.8 荧光标记cRNA样品纯化 | 第23页 |
| 3.9.10 cRNA样品片段化和芯片杂交（4x44K microarrays） | 第23页 |
| 3.9.11 芯片洗涤及扫描 | 第23-25页 |
| 3.10 数据分析 | 第25-26页 |
| 4 结果与分析 | 第26-42页 |
| 4.1 褪黑素表观试验结果 | 第26-33页 |
| 4.1.1 MT处理对大鼠生长的影响 | 第26-27页 |
| 4.1.2 MT不同处理组大鼠器官/组织的重量及脂肪含量 | 第27-28页 |
| 4.1.3 不同处理大鼠肝脏脂肪的含量 | 第28-30页 |
| 4.1.4 MT对大鼠脂代谢相关生化指标的影响 | 第30-33页 |
| 4.2 代谢组学试验结果 | 第33-37页 |
| 4.2.1 大鼠肝脏代表性1H-NMR图谱 | 第33-34页 |
| 4.2.2 PCA分析肝脏代谢图谱的差异 | 第34-35页 |
| 4.2.3 PLS‐DA分析肝脏代谢图谱的差异 | 第35-37页 |
| 4.2.4 潜在生物标志物的鉴定 | 第37页 |
| 4.3 基因芯片试验结果 | 第37-42页 |
| 5 讨论 | 第42-47页 |
| 5.1 MT对大鼠生长的影响 | 第42页 |
| 5.2 褪黑素对大鼠脂肪分配的影响 | 第42-43页 |
| 5.3 MT对大鼠脂肪代谢的影响 | 第43-44页 |
| 5.4 MT对肝脏代谢的影响 | 第44-45页 |
| 5.5 MT对主要基因的影响结果 | 第45-47页 |
| 6 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-54页 |
| 英文摘要 | 第54-55页 |
