| 摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 1 引言 | 第11-21页 |
| 1.1 益生菌及其研究进展 | 第11-14页 |
| 1.1.1 益生菌概述 | 第11页 |
| 1.1.2 益生菌的种类及特点 | 第11-12页 |
| 1.1.3 益生菌的作用机制 | 第12-14页 |
| 1.1.4 益生菌与动物免疫 | 第14页 |
| 1.2 杯状细胞及其研究进展 | 第14-18页 |
| 1.2.1 杯状细胞的形态 | 第14-15页 |
| 1.2.2 杯状细胞的发育 | 第15页 |
| 1.2.3 杯状细胞的分泌功能及调节 | 第15-16页 |
| 1.2.4 杯状细胞与疾病 | 第16-17页 |
| 1.2.5 杯状细胞的主要分泌物质 | 第17-18页 |
| 1.3 MUC2及其研究进展 | 第18-20页 |
| 1.3.1 MUC2的概述 | 第18页 |
| 1.3.2 MUC2与疾病 | 第18-20页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第20-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-32页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第21页 |
| 2.1.2 菌种 | 第21页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第21-22页 |
| 2.1.4 主要仪器设备 | 第22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-31页 |
| 2.2.1 益生菌微胶囊的制备 | 第22-23页 |
| 2.2.2 实验动物分组及其处理 | 第23页 |
| 2.2.3 被检材料采取 | 第23页 |
| 2.2.4 检测指标及方法 | 第23-31页 |
| 2.3 数据处理 | 第31-32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-54页 |
| 3.1 雏鸡应用益生菌后肠道杯状细胞组织结构和超微结构变化 | 第32页 |
| 3.2 雏鸡应用益生菌后肠道杯状细胞数量变化 | 第32-42页 |
| 3.2.1 雏鸡应用益生菌后肠道杯状细胞数量变化(PAS染色法) | 第32-34页 |
| 3.2.2 雏鸡应用益生菌后肠道杯状细胞数量变化(AB-PAS染色法) | 第34-42页 |
| 3.3 雏鸡应用益生菌后肠液中MUC2含量变化 | 第42-44页 |
| 3.4 雏鸡MUC2 mRNA表达Real Time PCR检测方法的建立及应用 | 第44-52页 |
| 3.4.1 总RNA质量鉴定 | 第44页 |
| 3.4.2 鸡MUC2及β-actin目的片段RT-PCR扩增电泳结果 | 第44-45页 |
| 3.4.3 肠道组织MUC2和β-actin mRNA表达 | 第45-46页 |
| 3.4.4 重组质粒PCR鉴定 | 第46-47页 |
| 3.4.5 MUC2和β-actin基因扩增片段序列测定 | 第47-48页 |
| 3.4.6 标准曲线的绘制 | 第48-50页 |
| 3.4.7 肠道组织MUC2 mRNA表达检测 | 第50-52页 |
| 3.5 雏鸡应用益生菌后肠道组织MUC2 mRNA表达变化 | 第52-54页 |
| 4 讨论 | 第54-59页 |
| 4.1 益生菌对雏鸡肠道杯状细胞的形态和数量的影响 | 第54-56页 |
| 4.1.1 益生菌对雏鸡肠道杯状细胞组织结构及超微结构的影响 | 第54-55页 |
| 4.1.2 益生菌对雏鸡肠道杯状细胞数量变化的影响 | 第55-56页 |
| 4.1.3 益生菌对雏鸡肠道杯状细胞分布影响 | 第56页 |
| 4.2 益生菌对雏鸡肠液MUC2蛋白含量及肠道组织MUC2 mRNA表达的影响 | 第56-59页 |
| 4.2.1 益生菌对雏鸡肠液MUC2含量的影响 | 第57页 |
| 4.2.2 益生菌对肠道组织MUC2 mRNA表达的影响 | 第57-59页 |
| 5 结论 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
| 附录 | 第68-72页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第72页 |
