| 缩略语表 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 前言 | 第14-15页 |
| 文献回顾 | 第15-23页 |
| 一、 宫颈癌概述 | 第15-16页 |
| 二、 辐射抵抗的机制研究 | 第16-18页 |
| 三、 miRNA 概论 | 第18-19页 |
| 四、 miRNA 与宫颈癌 | 第19-20页 |
| 五、 miRNA 与辐射抵抗 | 第20-23页 |
| 第一部分 宫颈癌辐射抵抗相关 MIRNAS 分子的筛选与验证 | 第23-38页 |
| 1 实验材料 | 第23-26页 |
| 1.1 材料 | 第23-24页 |
| 1.2 实验试剂 | 第24-25页 |
| 1.3 引物 | 第25页 |
| 1.4 仪器设备 | 第25-26页 |
| 1.5 MICRORNA 表达谱芯片 | 第26页 |
| 2 方法 | 第26-31页 |
| 2.1 MICRORNA 的提取 | 第26-28页 |
| 2.2 TRIZOL 法提取石蜡中 MICRORNA | 第28-29页 |
| 2.3 MIRNA 标记及阵列杂交 | 第29-30页 |
| 2.4 MIRNA 阵列分析 | 第30页 |
| 2.5 逆转录实时荧光定量 QRT-PCR 检测 MICRORNA 含量 | 第30-31页 |
| 3 实验结果 | 第31-35页 |
| 3.1 放疗敏感与放疗抵抗差异 MIRNA 表达谱分析 | 第31-34页 |
| 3.2 在临床标本中通过实时荧光定量 PCR 验证差异 MIRNA 表达情况 | 第34-35页 |
| 4 讨论 | 第35-38页 |
| 第二部分 MIR-4778-3P 对宫颈癌细胞系辐射后功能学影响及初步机制探索 | 第38-59页 |
| 1 实验材料 | 第38-39页 |
| 1.1 试剂 | 第38页 |
| 1.2 仪器 | 第38-39页 |
| 1.3 主要试剂配制 | 第39页 |
| 2 实验方法 | 第39-44页 |
| 2.1 细胞复苏 | 第39页 |
| 2.2 细胞冻存 | 第39-40页 |
| 2.3 细胞计数 | 第40页 |
| 2.4 细胞培养及传代 | 第40页 |
| 2.5 细胞转染 | 第40-41页 |
| 2.6 转染 MIR-4778-3P 对宫颈癌细胞系的功能影响 | 第41-44页 |
| 2.7 统计学分析 | 第44页 |
| 2.8 生物学软件初步预测 MIR-4778-3P 的下游靶基因 | 第44页 |
| 3 实验结果 | 第44-54页 |
| 3.1 正常培养下 HELA 和 SIHA 细胞形态 | 第44-45页 |
| 3.2 细胞转染效率鉴定 | 第45-46页 |
| 3.3 MIR-4778-3P 可明显抑制辐射后 HELA 细胞及 SIHA 细胞的活力 | 第46页 |
| 3.4 MIR-4778-3P 对辐射后 HELA 及 SIHA 细胞系细胞凋亡无明显影响 | 第46-48页 |
| 3.5 MIR-4778-3P 对辐射后 HELA 及 SIHA 细胞系细胞周期无明显影响 | 第48-49页 |
| 3.6 MIR-4778-3P 可明显抑制辐射后 HELA 细胞的迁移活力 | 第49-51页 |
| 3.7 MIR-4778-3P 可明显抑制辐射后 SIHA 细胞的侵袭活力 | 第51-53页 |
| 3.8 MIR-4778-3P 可明显抑制辐射后 HELA 细胞的活力 | 第53页 |
| 3.9 MIR-4778-3P 下游靶基因的预测和初步筛选 | 第53-54页 |
| 4 讨论 | 第54-59页 |
| 小结 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-71页 |
| 个人简历和研究成果 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
