符号说明 | 第4-10页 |
中文摘要 | 第10-11页 |
Abstract | 第11-12页 |
1 前言 | 第13-28页 |
1.1 天然产物有效成分的提取富集方法 | 第13-15页 |
1.1.1 煎煮法 | 第13页 |
1.1.2 回流提取法 | 第13-14页 |
1.1.3 超声辅助提取技术 | 第14页 |
1.1.4 超临界流体萃取技术 | 第14-15页 |
1.1.5 微波辅助萃取技术 | 第15页 |
1.2 超高压提取技术 | 第15-20页 |
1.2.1 超高压提取原理 | 第15-16页 |
1.2.2 超高压提取工艺 | 第16页 |
1.2.3 超高压设备 | 第16-17页 |
1.2.4 超高压提取技术的特点 | 第17页 |
1.2.5 国内外研究现状和发展趋势 | 第17-20页 |
1.2.5.1 黄酮类化合物的提取 | 第18-19页 |
1.2.5.2 皂苷类化合物的提取 | 第19-20页 |
1.2.5.3 多糖类化合物的提取 | 第20页 |
1.2.5.4 其他化合物的提取 | 第20页 |
1.3 浊点萃取 | 第20-26页 |
1.3.1 胶束的形成 | 第20页 |
1.3.2 萃取原理 | 第20-21页 |
1.3.3 CPE 萃取效率的影响因素 | 第21-22页 |
1.3.3.1 表面活性剂类型及性质对 CPE 萃取效率的影响 | 第21-22页 |
1.3.3.2 平衡温度和时间对 CPE 萃取效率的影响 | 第22页 |
1.3.3.3 添加剂对 CPE 萃取效率的影响 | 第22页 |
1.3.4 浊点萃取技术的优点及应用 | 第22-26页 |
1.3.4.1 浊点萃取的优点 | 第22页 |
1.3.4.2 浊点萃取在痕量金属元素分析中的应用 | 第22-25页 |
1.3.4.3 浊点萃取在天然产物有效成分分析中的应用 | 第25-26页 |
1.4 本课题的提出及研究内容 | 第26-28页 |
2 材料与方法 | 第28-35页 |
2.1 仪器与试剂 | 第28-30页 |
2.1.1 仪器 | 第28页 |
2.1.2 试剂 | 第28-30页 |
2.2 实验方法 | 第30-35页 |
2.2.1 莲子心中总生物碱的提取富集 | 第30-31页 |
2.2.1.1 超高压提取 | 第30-31页 |
2.2.1.2 浊点萃取 | 第31页 |
2.2.2 荷叶中总生物碱的提取富集 | 第31页 |
2.2.2.1 超高压提取 | 第31页 |
2.2.2.2 超声波提取 | 第31页 |
2.2.2.3 热回流提取 | 第31页 |
2.2.2.4 浊点萃取 | 第31页 |
2.2.3 黄芩中总黄酮的提取富集 | 第31-32页 |
2.2.3.1 超高压提取 | 第31-32页 |
2.2.3.2 超声波提取 | 第32页 |
2.2.3.3 热回流提取 | 第32页 |
2.2.3.4 浊点萃取 | 第32页 |
2.2.4 菟丝子中总黄酮的提取富集 | 第32-33页 |
2.2.4.1 超高压法提取 | 第32页 |
2.2.4.2 超声波提取 | 第32页 |
2.2.4.3 热回流提取 | 第32-33页 |
2.2.4.4 浊点萃取 | 第33页 |
2.2.5 含量测定 | 第33-35页 |
2.2.5.1 莲子心中总生物碱含量的测定 | 第33页 |
2.2.5.2 荷叶中总生物碱含量的测定 | 第33页 |
2.2.5.3 黄芩中总黄酮含量的测定 | 第33页 |
2.2.5.4 菟丝子中总黄酮含量的测定 | 第33-34页 |
2.2.5.5 提取率、萃取回收率及浓缩系数 | 第34-35页 |
3 结果与分析 | 第35-58页 |
3.1 莲子心中总生物碱提取富集条件的优化 | 第35-39页 |
3.1.1 莲子心 | 第35页 |
3.1.2 液-固提取 | 第35-37页 |
3.1.2.1 表面活性剂的选择 | 第35页 |
3.1.2.2 OP-10 浓度对提取率的影响 | 第35-36页 |
3.1.2.3 提取压强对提取率的影响 | 第36页 |
3.1.2.4 保压时间对提取率的影响 | 第36页 |
3.1.2.5 料液比对提取率的影响 | 第36-37页 |
3.1.3 液-液萃取 | 第37-39页 |
3.1.3.1 NaCl 浓度对萃取回收率的影响 | 第37-38页 |
3.1.3.2 平衡温度对萃取回收率的影响 | 第38-39页 |
3.1.3.3 平衡时间对萃取回收率的影响 | 第39页 |
3.2 荷叶中总生物碱提取富集条件的优化 | 第39-45页 |
3.2.1 荷叶 | 第39页 |
3.2.2 液-固提取 | 第39-41页 |
3.2.2.1 表面活性剂的选择 | 第39-40页 |
3.2.2.2 OP-10 浓度对提取率的影响 | 第40页 |
3.2.2.3 提取压强对提取率的影响 | 第40页 |
3.2.2.4 保压时间对提取率的影响 | 第40页 |
3.2.2.5 料液比对提取率的影响 | 第40页 |
3.2.2.6 不同提取方法的比较 | 第40-41页 |
3.2.3 液-液萃取 | 第41-44页 |
3.2.3.1 表面活性剂浓度对萃取回收率的影响 | 第41-42页 |
3.2.3.2 NaCl 浓度对萃取回收率的影响 | 第42页 |
3.2.3.3 平衡温度对萃取回收率的影响 | 第42-43页 |
3.2.3.4 平衡时间对萃取回收率的影响 | 第43-44页 |
3.2.4 最优化条件 | 第44-45页 |
3.2.5 方法学验证 | 第45页 |
3.3 黄芩中总黄酮提取富集条件的优化 | 第45-51页 |
3.3.1 黄芩 | 第45-46页 |
3.3.2 液-固提取 | 第46-48页 |
3.3.2.1 表面活性剂的选择 | 第46页 |
3.3.2.2 NP-10 浓度对提取率的影响 | 第46页 |
3.3.2.3 提取压强对提取率的影响 | 第46页 |
3.3.2.4 保压时间对提取率的影响 | 第46页 |
3.3.2.5 料液比对提取率的影响 | 第46-47页 |
3.3.2.6 不同提取方法的比较 | 第47-48页 |
3.3.3 液-液萃取 | 第48-49页 |
3.3.3.1 正辛醇浓度对萃取回收率的影响 | 第48-49页 |
3.3.3.2 平衡温度对萃取回收率的影响 | 第49页 |
3.3.3.3 平衡时间对萃取回收率的影响 | 第49页 |
3.3.4 最优化条件 | 第49-50页 |
3.3.5 方法学验证 | 第50-51页 |
3.3.6 胶束萃取对黄芩微观结构的影响 | 第51页 |
3.4 菟丝子中总黄酮提取富集条件的优化 | 第51-58页 |
3.4.1 菟丝子 | 第51-52页 |
3.4.2 液-固提取 | 第52-54页 |
3.4.2.1 表面活性剂的选择 | 第52页 |
3.4.2.2 Triton X-100 浓度对提取率的影响 | 第52页 |
3.4.2.3 提取压强对提取率的影响 | 第52页 |
3.4.2.4 保压时间对提取率的影响 | 第52-53页 |
3.4.2.5 料液比对提取率的影响 | 第53-54页 |
3.4.2.6 不同提取方法的比较 | 第54页 |
3.4.3 液-液萃取 | 第54-55页 |
3.4.3.1 NaCl 浓度对萃取回收率的影响 | 第54页 |
3.4.3.2 平衡温度对萃取回收率的影响 | 第54页 |
3.4.3.3 平衡时间对萃取回收率的影响 | 第54-55页 |
3.4.4 最优化条件 | 第55-56页 |
3.4.5 方法学验证 | 第56-58页 |
4 讨论 | 第58-59页 |
5 结论 | 第59-60页 |
6 创新之处 | 第60-61页 |
7 参考文献 | 第61-72页 |
8 致谢 | 第72-73页 |
9 攻读学位期间发表论文情况 | 第73页 |