摘要 | 第8-10页 |
Abstract | 第10-12页 |
第一章 文献综述 | 第13-23页 |
1.1 植物花色素及其代谢调节 | 第13-16页 |
1.1.1 花色素概述 | 第13-14页 |
1.1.2 花色素的合成途径 | 第14页 |
1.1.3 影响花色素合成的因素 | 第14-16页 |
1.2 MYB转录因子对花色素合成的调控 | 第16-20页 |
1.2.1 MYB转录因子的概述 | 第16-17页 |
1.2.2 MYB转录因子对花色素合成的调控机制 | 第17-19页 |
1.2.3 拟南芥中R2R3-MYB转录因子PAP1 | 第19-20页 |
1.3 陆地棉亚红株新突变体的研究进展 | 第20-23页 |
1.3.1 陆地棉亚红株突变体的发现 | 第20页 |
1.3.2 陆地棉亚红株突变体的光合特性 | 第20页 |
1.3.3 陆地棉亚红株突变体的质量遗传规律 | 第20-21页 |
1.3.4 陆地棉亚红株(Rs)基因的初步定位 | 第21页 |
1.3.5 陆地棉亚红株的应用前景 | 第21-23页 |
第二章 引言 | 第23-25页 |
2.1 立论依据 | 第23-24页 |
2.2 技术路线 | 第24-25页 |
第三章 材料与方法 | 第25-35页 |
3.1 材料 | 第25-27页 |
3.1.1 植物材料 | 第25页 |
3.1.2 供试菌株与载体质粒 | 第25页 |
3.1.3 主要仪器设备 | 第25页 |
3.1.4 主要化学试剂 | 第25-26页 |
3.1.5 主要溶液及配方 | 第26页 |
3.1.6 主要培养基及配方 | 第26-27页 |
3.2 实验方法 | 第27-35页 |
3.2.1 基因克隆 | 第27-28页 |
3.2.2 序列分析 | 第28页 |
3.2.3 超量表达载体的构建 | 第28-29页 |
3.2.4 农杆菌感受态细胞的制备和转化 | 第29-30页 |
3.2.5 烟草的遗传转化 | 第30-31页 |
3.2.6 转基因植株的鉴定 | 第31页 |
3.2.7 花色素的提取和测定 | 第31页 |
3.2.8 基因的定量RT-PCR检测 | 第31-32页 |
3.2.9 基因连锁检测 | 第32页 |
3.2.10 聚丙烯酰胺凝胶电泳和银染显色 | 第32-35页 |
第四章 结果与分析 | 第35-51页 |
4.1 陆地棉新亚红突变株 | 第35-36页 |
4.1.1 亚红株棉的表型观察 | 第35页 |
4.1.2 亚红株棉花色素含量的测定 | 第35-36页 |
4.2 陆地棉PAP1同源基因的克隆和序列分析 | 第36-40页 |
4.2.1 陆地棉PAP1同源基因的克隆 | 第36-37页 |
4.2.2 陆地棉PAP1同源蛋白的序列分析 | 第37-39页 |
4.2.3 陆地棉PAP1同源蛋白的进化分析 | 第39-40页 |
4.3 PAP1同源基因的转基因功能分析 | 第40-45页 |
4.3.1 超量表达载体的构建和转基因烟草植株的获得 | 第40-42页 |
4.3.2 超量表达PAP1同源基因可以改变烟草植株的颜色 | 第42-44页 |
4.3.3 转基因烟草植株花色素含量及基因表达量的测定 | 第44-45页 |
4.3.4 花色素合成途径中结构基因的表达量的测定 | 第45页 |
4.4 PAP1同源基因在亚红株棉中的表达分析 | 第45-46页 |
4.5 GhPAP1A基因的启动子的研究 | 第46-51页 |
4.5.1 GhPAP1A基因的启动子的克隆和序列分析 | 第46-48页 |
4.5.2 亚红株F2群体的检测 | 第48-51页 |
第五章 讨论 | 第51-53页 |
5.1 陆地棉PAP1同源基因对花色素合成的调控 | 第51页 |
5.2 GhPAP1A基因的启动子的功能 | 第51页 |
5.3 Rs基因较R1基因的优势 | 第51-53页 |
第六章 主要结论和创新点 | 第53-55页 |
6.1 主要结论 | 第53页 |
6.2 创新点 | 第53-55页 |
参考文献 | 第55-59页 |
致谢 | 第59-61页 |
附录 | 第61-65页 |
附录Ⅰ 英文缩略词对照表 | 第61-63页 |
附录Ⅱ 亚红株棉F2群体的性状与电泳带型统计表 | 第63-65页 |
附录Ⅲ 攻读硕士期间发表的摘要及文章 | 第65页 |