| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 前言 | 第15-19页 |
| 研究现状、成果 | 第15-18页 |
| 研究目的、方法 | 第18-19页 |
| 一、化学遗传学筛选抑制斑马鱼血管生成小分子化合物 | 第19-42页 |
| 1.1 对象和方法 | 第19-21页 |
| 1.1.1 Tg(flk1：EGFP)斑马鱼 | 第19页 |
| 1.1.2 候选药物 | 第19页 |
| 1.1.3 斑马鱼饲养和胚胎搜集 | 第19-20页 |
| 1.1.4 药物筛选 | 第20-21页 |
| 1.2 结果 | 第21-24页 |
| 1.2.1 利用转基因斑马鱼筛选抗血管生成化合物 | 第21-23页 |
| 1.2.2 罗伐他汀以浓度依赖性方式特异性地抑制斑马鱼血管生成 | 第23-24页 |
| 1.3 讨论 | 第24-41页 |
| 1.3.1 斑马鱼化学遗传学 | 第24-27页 |
| 1.3.2 鱼藤酮类化合物 | 第27-30页 |
| 1.3.3 马兜铃酸 | 第30-32页 |
| 1.3.4 他汀类药物简介 | 第32-36页 |
| 1.3.5 他汀类药物抗肿瘤和抗血管生成作用 | 第36-41页 |
| 1.4 小结 | 第41-42页 |
| 二、罗伐他汀抗血管生成作用机制的体外实验研究 | 第42-71页 |
| 2.1 对象和方法 | 第42-53页 |
| 2.1.1 人脐静脉内皮细胞培养 | 第42-43页 |
| 2.1.2 内皮细胞增殖、小管形成和迁移实验 | 第43-47页 |
| 2.1.3 内皮细胞细胞周期和凋亡检测 | 第47-49页 |
| 2.1.4 内皮细胞血管生成调控基因表达检测 | 第49-53页 |
| 2.2 结果 | 第53-60页 |
| 2.2.1 罗伐他汀抑制HUVEC体外增殖、小管形成和迁移 | 第53-56页 |
| 2.2.2 罗伐他汀诱导内皮细胞G_1期阻滞、促进细胞凋亡 | 第56-58页 |
| 2.2.3 罗伐他汀引起内皮细胞血管生成通路调节基因谱的差异表达 | 第58-60页 |
| 2.3 讨论 | 第60-70页 |
| 2.3.1 肿瘤血管生成抑制剂 | 第60-64页 |
| 2.3.2 罗伐他汀抑制体外血管生成机制 | 第64-70页 |
| 2.4 小结 | 第70-71页 |
| 三、罗伐他汀治疗前列腺癌的实验研究 | 第71-82页 |
| 3.1 对象和方法 | 第71-73页 |
| 3.1.1 人前列腺癌细胞系PPC-1细胞增殖检测 | 第71页 |
| 3.1.2 免疫缺陷鼠人前列腺癌PPC-1细胞移植瘤生长抑制实验 | 第71-72页 |
| 3.1.3 肿瘤微血管密度检测 | 第72-73页 |
| 3.1.4 药物毒性研究 | 第73页 |
| 3.2 结果 | 第73-79页 |
| 3.2.1 罗伐他汀抑制人前列腺癌细胞系PPC-1体外增殖 | 第73-74页 |
| 3.2.2 罗伐他汀抑制人前列腺癌细胞系PPC-1小鼠鼠移植瘤体内生长 | 第74-76页 |
| 3.2.3 罗伐他汀降低人前列腺癌细胞小鼠移植瘤微血管密度 | 第76-77页 |
| 3.2.4 罗伐他汀实验性治疗前列腺癌的生物安全性 | 第77-79页 |
| 3.3 讨论 | 第79-81页 |
| 3.4 小结 | 第81-82页 |
| 全文结论 | 第82-84页 |
| 论文创新点 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-93页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第93-94页 |
| 附录 | 第94-95页 |
| 综述一 | 第95-104页 |
| 综述一参考文献 | 第101-104页 |
| 综述二 | 第104-123页 |
| 综述二参考文献 | 第113-123页 |
| 致谢 | 第123页 |
