摘要 | 第2-3页 |
Abstract | 第3页 |
引言 | 第6-8页 |
第一章 实验材料与方法 | 第8-13页 |
1.1 实验动物 | 第8页 |
1.2 主要实验仪器和实验试剂 | 第8-9页 |
1.2.1 主要实验仪器和器械 | 第8页 |
1.2.2 主要实验试剂 | 第8-9页 |
1.3 主要指标与实验方法 | 第9-12页 |
1.3.1 SD大鼠视网膜神经细胞的原代培养 | 第9-11页 |
1.3.1.1 主要试剂的配制 | 第9页 |
1.3.1.2 多聚赖氨酸处理细胞培养瓶或培养板 | 第9页 |
1.3.1.3 原代视网膜神经细胞悬液的制备 | 第9-10页 |
1.3.1.4 原代视网膜神经细胞的接种培养 | 第10页 |
1.3.1.5 视网膜神经细胞的形态学观察及鉴定 | 第10-11页 |
1.3.2 高糖模型的建立及实验分组 | 第11页 |
1.3.3 高糖条件下视网膜神经细胞台盼蓝拒染实验 | 第11-12页 |
1.3.4 四甲基偶氮唑盐(MTT)法检测细胞活力 | 第12页 |
1.3.5 流式细胞仪检测细胞ROS | 第12页 |
1.3.6 Hoechst33342染色检测细胞凋亡 | 第12页 |
1.3.7 流式细胞仪检测线粒体膜电位(△Ψm) | 第12页 |
1.4 统计学处理 | 第12-13页 |
第二章 实验结果 | 第13-18页 |
2.1 视网膜神经细胞形态学观察及鉴定结果 | 第13页 |
2.2 葡萄糖浓度及高糖模型的确立 | 第13页 |
2.3 左卡尼汀对高糖损伤视网膜神经细胞活力的影响 | 第13-14页 |
2.4 左卡尼汀对高糖损伤视网膜神经细胞内ROS水平的影响 | 第14-15页 |
2.5 左卡尼汀对高糖损伤视网膜神经细胞凋亡的影响 | 第15-16页 |
2.6 左卡尼汀对高糖损伤视网膜神经细胞线粒体膜电位的影响 | 第16-18页 |
第三章 讨论 | 第18-23页 |
3.1 视网膜神经细胞的原代培养 | 第18-19页 |
3.2 视网膜神经细胞的鉴定 | 第19页 |
3.3 高浓度葡萄糖对视网膜神经细胞的存活率及细胞活性的影响 | 第19-20页 |
3.4 左卡尼汀对视网膜神经细胞氧化应激的影响 | 第20-21页 |
3.5 左卡尼汀对视网膜神经细胞凋亡的影响 | 第21-23页 |
结论 | 第23-24页 |
参考文献 | 第24-27页 |
附图 | 第27-33页 |
综述 | 第33-48页 |
综述参考文献 | 第43-48页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第48-49页 |
致谢 | 第49-50页 |