| 缩略语表 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 前言 | 第10-11页 |
| 文献回顾 | 第11-17页 |
| 实验一 角质形成细胞诱导分化对 Notch 信号的影响 | 第17-29页 |
| 1 材料 | 第17-18页 |
| 1.1 主要试剂 | 第17页 |
| 1.2 主要耗材 | 第17-18页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第18页 |
| 2 方法 | 第18-20页 |
| 2.1 新生儿包皮角质形成细胞的培养 | 第18页 |
| 2.2 角质形成细胞各种刺激物的配置 | 第18页 |
| 2.3 角质形成细胞的复层培养 | 第18-19页 |
| 2.4 qRT-PCR 检测 | 第19-20页 |
| 2.5 统计学处理 | 第20页 |
| 3 结果 | 第20-26页 |
| 3.1 通过复合培养的方法，对角质形成细吧进行诱导分化，检测 Notch 信号的表达情况 | 第20-23页 |
| 3.2 Fc 段、DMSO（DAPT 溶剂）对调节 Notch 信号的影响 | 第23-26页 |
| 4 讨论 | 第26-29页 |
| 实验二 调节角质形成细胞中的 Notch 信号对成纤维细胞活性的影响 | 第29-42页 |
| 1 材料 | 第29-30页 |
| 1.1 主要试剂 | 第29页 |
| 1.2 主要耗材 | 第29-30页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第30页 |
| 2 方法 | 第30-33页 |
| 2.1 新生儿包皮角质形成细胞的培养 | 第30页 |
| 2.2 角质形成细胞各种刺激物的配置 | 第30-31页 |
| 2.3 人正常皮肤成纤维细胞的原代培养 | 第31页 |
| 2.4 角质形成细胞-成纤维细胞复合培养模型的建立 | 第31页 |
| 2.5 成纤维细胞细胞计数 | 第31-32页 |
| 2.6 ELISA 试剂盒检测细胞培养上清中的 Collagen-1 | 第32页 |
| 2.7 ELISA 试剂盒检测细胞培养上清中的 Fibronectin | 第32页 |
| 2.8 ELISA 试剂盒检测细胞培养上清中的 KGF | 第32页 |
| 2.9 qRT-PCR 检测 | 第32页 |
| 2.10 统计学处理 | 第32-33页 |
| 3 结果 | 第33-40页 |
| 3.1 对成纤维细胞增殖能力的影响 | 第33-34页 |
| 3.2 对成纤维细胞合成和分泌细胞外基质的影响 | 第34-37页 |
| 3.3 对成纤维细胞合成和分泌 KGF 的影响 | 第37-38页 |
| 3.4 对成纤维细胞合成促纤维化相关因子的影响 | 第38-40页 |
| 4 讨论 | 第40-42页 |
| 小结 | 第42-44页 |
| 参考文献 | 第44-50页 |
| 个人简历和研究成果 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51页 |
