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大麦黄矮病毒GAV与二穗短柄草互作蛋白的筛选鉴定研究

摘要第5-7页
ABSTRACT第7-9页
第一章 文献综述第14-38页
    1.1 大麦黄矮病毒研究现状第14-22页
        1.1.1 概述第14页
        1.1.2 分类地位第14-16页
        1.1.3 基因组结构第16页
        1.1.4 基因功能及表达第16-20页
            1.1.4.1 基因功能第16-18页
            1.1.4.2 基因表达第18-20页
        1.1.5 蚜虫传播第20-22页
    1.2 二穗短柄草研究现状第22-29页
        1.2.1 生物学特性第22-23页
        1.2.2 细胞学特性第23页
        1.2.3 基因组第23-25页
            1.2.3.1 基因组的组装及注释第23-24页
            1.2.3.2 基因组比较分析第24-25页
        1.2.4 遗传转化体系第25-27页
            1.2.4.1 转化第25-26页
            1.2.4.2 T-DNA突变第26-27页
        1.2.5 病毒诱导的基因沉默体系第27-28页
        1.2.6 应用第28-29页
    1.3 病毒与植物寄主的互作机制研究进展第29-32页
        1.3.1 寄主因子参与病毒粒子解体及病毒基因组翻译第29-30页
        1.3.2 寄主因子参与病毒基因组复制第30-31页
        1.3.3 寄主因子参与病毒运输第31-32页
    1.4 蛋白互作研究技术第32-36页
        1.4.1 酵母双杂交技术第32-34页
        1.4.2 Pull-down技术第34页
        1.4.3 免疫共沉淀技术第34-35页
        1.4.4 双分子荧光互补第35-36页
    1.5 本研究的目的及意义第36-38页
第二章 BYDV-GAV与二穗短柄草互作体系构建第38-51页
    2.1 引言第38页
    2.2 材料与方法第38-42页
        2.2.1 试验材料及试剂、仪器第38-39页
            2.2.1.1 植物材料第38页
            2.2.1.2 病毒和蚜虫材料第38-39页
            2.2.1.3 试验试剂第39页
        2.2.2 试验方法第39-42页
            2.2.2.1 植物培养第39-40页
            2.2.2.2 病毒接种第40页
            2.2.2.3 症状观察分析第40页
            2.2.2.4 RNA提取及cDNA合成第40页
            2.2.2.5 PCR检测第40-41页
            2.2.2.6 血清学分析第41页
            2.2.2.7 透射电镜观察第41-42页
    2.3 结果与分析第42-49页
        2.3.1 BYDV-GAV能够侵染二穗短柄草Bd21-3第42-48页
            2.3.1.1 症状观察第42-43页
            2.3.1.2 分子检测第43-44页
            2.3.1.3 血清学分析第44-45页
            2.3.1.4 病毒粒子观察第45-46页
            2.3.1.5 细胞学观察第46-47页
            2.3.1.6 蚜虫传毒实验第47-48页
        2.3.2 BYDV-GAV在小麦和二穗短柄草中的侵染过程比较第48-49页
            2.3.2.1 症状扩展第48页
            2.3.2.2 病毒粒子积累模式分析第48-49页
    2.4 结论与讨论第49-51页
第三章 酵母双杂交筛选BYDV-GAV与二穗短柄草中的互作蛋白第51-77页
    3.1 引言第51页
    3.2 材料与方法第51-66页
        3.2.1 试验材料及试剂第51-53页
            3.2.1.1 病毒材料第51页
            3.2.1.2 载体和菌株第51页
            3.2.1.3 试剂第51-53页
        3.2.2 基因克隆方法第53-58页
            3.2.2.1 RNA提取第53-54页
            3.2.2.2 基因扩增第54-55页
            3.2.2.3 回收纯化第55页
            3.2.2.4 T-A连接第55-56页
            3.2.2.5 大肠杆菌感受态细胞制备第56页
            3.2.2.6 转化第56页
            3.2.2.7 菌落PCR检测第56-57页
            3.2.2.8 质粒提取第57-58页
        3.2.3 酵母文库构建第58-61页
            3.2.3.1 入门文库转化酵母文库第58-59页
            3.2.3.2 文库滴度测定第59页
            3.2.3.3 文库质量检测第59页
            3.2.3.4 酵母文库扩增第59-60页
            3.2.3.5 文库质粒提取第60-61页
        3.2.4 酵母双杂交第61-66页
            3.2.4.1 Gateway入门克隆第61页
            3.2.4.2 诱饵载体构建第61-62页
            3.2.4.3 转化酵母细胞第62-63页
            3.2.4.4 自激活检测第63页
            3.2.4.5 文库筛选第63-64页
            3.2.4.6 报告基因检测第64-65页
            3.2.4.7 猎物质粒挽救第65-66页
            3.2.4.8 序列比对分析第66页
    3.3 结果与分析第66-75页
        3.3.1 酵母文库构建第66-68页
            3.3.1.1 文库滴度测定第66-67页
            3.3.1.2 文库质量检测第67页
            3.3.1.3 文库扩繁第67-68页
            3.3.1.4 文库质粒提取第68页
        3.3.2 诱饵载体构建第68-70页
            3.3.2.1 基因克隆第68-69页
            3.3.2.2 入门载体构建第69-70页
            3.3.2.3 诱饵载体构建第70页
        3.3.3 自激活检测第70-71页
        3.3.4 酵母双杂交筛库第71-75页
            3.3.4.1 转化效率第71-72页
            3.3.4.2 文库筛选第72页
            3.3.4.3 报告基因检测第72-73页
            3.3.4.4 筛选结果分析第73-74页
            3.3.4.5 重转化互作验证第74-75页
    3.4 结论与讨论第75-77页
第四章 MP与VOZ1的互作验证第77-94页
    4.1 引言第77页
    4.2 材料与方法第77-85页
        4.2.1 试验材料及试剂第77-79页
            4.2.1.1 植物材料第77页
            4.2.1.2 载体和菌株第77-78页
            4.2.1.3 试剂第78-79页
        4.2.2 BdVOZ1基因的克隆第79页
        4.2.3 生物信息学分析第79-80页
            4.2.3.1 多序列比对和进化树分析第79页
            4.2.3.2 蛋白质三级结构预测第79-80页
            4.2.3.3 蛋白亲疏水性分析第80页
        4.2.4 GST pull-down试验方法第80-83页
            4.2.4.1 原核表达载体构建第80页
            4.2.4.2 蛋白表达及纯化第80-81页
            4.2.4.3 SDS-PAGE凝胶电泳第81页
            4.2.4.4 Western blot检测第81-82页
            4.2.4.5 GST pull-down实验第82-83页
        4.2.5 双分子荧光互补及亚细胞定位第83-85页
            4.2.5.1 载体构建第83页
            4.2.5.2 农杆菌电转感受态细胞的制备第83-84页
            4.2.5.3 农杆菌电击转化第84页
            4.2.5.4 农杆菌接种第84页
            4.2.5.5 荧光显微镜观察第84-85页
    4.3 结果与分析第85-93页
        4.3.1 VOZ1基因的克隆及生物信息学分析第85-87页
        4.3.2 GST pull-down验证互作第87-90页
            4.3.2.1 融合蛋白的亲疏水性分析第87页
            4.3.2.2 原核表达载体构建第87-88页
            4.3.2.3 GST-MP融合蛋白表达及纯化第88页
            4.3.2.4 MBP-BdVOZ1融合蛋白表达第88-89页
            4.3.2.5 GST pull-down验证互作第89-90页
        4.3.3 亚细胞定位第90-91页
            4.3.3.1 亚细胞定位载体构建第90页
            4.3.3.2 MP的亚细胞定位第90页
            4.3.3.3 VOZ1的亚细胞定位第90-91页
        4.3.4 BiFC验证互作第91-93页
            4.3.4.1 BiFC载体构建第91页
            4.3.4.2 BiFC验证MP与BdVOZ1的互作第91-93页
    4.4 结论与讨论第93-94页
第五章 全文结论及展望第94-96页
    5.1 全文结论第94页
    5.2 创新点第94-95页
    5.3 展望第95-96页
参考文献第96-108页
附录第108-111页
缩略词第111-114页
致谢第114-115页
作者简介第115页

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