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秸秆酶解及炼制燃料乙醇的研究

摘要第4-5页
Abstract第5-6页
第一章 文献综述第11-18页
    1.1 研究背景第11页
    1.2 秸秆天然组成及结构第11-13页
        1.2.1 纤维素第12页
        1.2.2 半纤维素第12-13页
        1.2.3 木质素第13页
    1.3 秸秆解聚进展第13-15页
        1.3.1 物理法第13页
        1.3.2 化学法第13-15页
        1.3.3 生物法第15页
    1.4 秸秆酶解研究进展第15-16页
    1.5 本课题主要技术路线与研究内容第16-18页
        1.5.1 本课题主要技术路线第16-17页
        1.5.2 主要内容第17-18页
第二章 复合酶协同酶解酸解聚后玉米秸秆的研究第18-30页
    2.1 引言第18页
    2.2 材料第18-19页
        2.2.1 材料第18页
        2.2.2 菌种第18页
        2.2.3 试剂与仪器第18-19页
    2.3 试验方法第19-20页
        2.3.1 稀酸解聚第19页
        2.3.2 酶解单因素试验第19-20页
        2.3.3 乙醇发酵第20页
    2.4 分析方法与计算第20-22页
        2.4.1 液体产物分析第20页
        2.4.2 固体残渣分析第20-21页
        2.4.3 NREL组成测定第21-22页
    2.5 酶活测定第22-23页
        2.5.1 纤维素酶活测定第22页
        2.5.2 β-葡萄糖苷酶测定第22页
        2.5.3 果胶酶测定第22-23页
    2.6 结果与讨论第23-29页
        2.6.1 纤维素酶对糖得率及酶解效果的影响第23-24页
        2.6.2 β-葡萄糖苷酶与纤维素酶对糖得率及酶解效果的研究第24-25页
        2.6.3 复合酶对糖得率和酶解的影响第25-26页
        2.6.4 玉米秸秆各组分的官能团变化第26-27页
        2.6.5 玉米秸秆结晶度的变化第27-28页
        2.6.6 玉米秸秆处理前后表面形态变化第28-29页
    2.7 小结第29-30页
第三章 玉米秸秆酸解液中抑制物对酒精酵母乙醇发酵的影响第30-39页
    3.1 引言第30页
    3.2 材料第30-31页
        3.2.1 原料第30页
        3.2.2 菌种第30页
        3.2.3 仪器与试剂第30-31页
    3.3 试验方法第31页
        3.3.1 培养基第31页
        3.3.2 菌种的制备第31页
        3.3.3 秸秆酸解聚第31页
        3.3.4 副产物发酵第31页
    3.4 检测方法第31-32页
        3.4.1 水解液分析第31-32页
        3.4.2 发酵液分析第32页
    3.5 水解液中抑制物对乙醇发酵的分析第32-34页
        3.5.1 酸解聚抑制物组成及含量第32页
        3.5.2 水解液中单独抑制物对乙醇发酵的影响第32-33页
        3.5.3 水解液中混合抑制物对乙醇发酵的影响第33-34页
    3.6 高浓度抑制物对乙醇发酵的结果分析第34-37页
        3.6.1 乙酸对乙醇发酵的影响第34-35页
        3.6.2 糠醛和5-HMF对乙醇发酵的影响第35-36页
        3.6.3 阿魏酸和对香豆酸对乙醇发酵的影响第36-37页
    3.7 抑制物分批发酵对乙醇得影响第37-38页
    3.8 小结第38-39页
第四章 NMMO耦合酸解聚玉米秸秆提高酶解得率及乙醇产量的研究第39-47页
    4.1 引言第39页
    4.2 材料第39-40页
        4.2.1 原料第39页
        4.2.2 菌种第39页
        4.2.3 仪器及试剂第39-40页
    4.3 玉米秸秆解聚方法第40-41页
        4.3.1 培养基第40页
        4.3.2 菌种的制备第40页
        4.3.3 酸解聚处理第40页
        4.3.4 NMMO解聚处理第40页
        4.3.5 酶解处理第40-41页
        4.3.6 分步糖化和发酵(SHF)第41页
    4.4 分析方法第41-42页
        4.4.1 高效液相色谱分析第41页
        4.4.2 秸秆组成分析第41页
        4.4.3 气相色谱分析第41页
        4.4.4 红外光谱分析第41-42页
        4.4.5 X-射线衍射分析第42页
    4.5 结果与分析第42-46页
        4.5.1 玉米秸秆组成变化分析第42-43页
        4.5.2 玉米秸秆结晶度分析第43页
        4.5.3 玉米秸秆结构的变化第43-44页
        4.5.4 玉米秸秆酶解分析第44-45页
        4.5.5 乙醇发酵分析第45-46页
    4.6 小结第46-47页
第五章 NMMO耦合碱解聚玉米秸秆提高酶解得率及乙醇产量的研究第47-55页
    5.1 引言第47页
    5.2 材料第47-48页
        5.2.1 原料第47页
        5.2.2 菌种第47页
        5.2.3 仪器及试剂第47-48页
    5.3 玉米秸秆解聚方法第48-49页
        5.3.1 培养基第48页
        5.3.2 菌种的制备第48页
        5.3.3 碱解聚处理第48页
        5.3.4 NMMO解聚处理第48页
        5.3.5 酶解处理第48页
        5.3.6 分步糖化和发酵(SHF)第48-49页
    5.4 分析方法第49页
        5.4.1 高效液相色谱分析第49页
        5.4.2 秸秆组成分析第49页
        5.4.3 气相色谱分析第49页
        5.4.4 红外光谱分析第49页
        5.4.5 X-射线衍射分析第49页
    5.5 结果与分析第49-54页
        5.5.1 玉米秸秆组成变化分析第49-50页
        5.5.2 玉米秸秆结晶度分析第50-51页
        5.5.3 红外光谱分析第51-52页
        5.5.4 玉米秸秆酶解分析第52-53页
        5.5.5 乙醇发酵分析第53-54页
    5.6 小结第54-55页
第六章 结论与创新点第55-56页
    6.1 结论第55页
    6.2 创新点第55-56页
参考文献第56-62页
致谢第62-63页
作者简介第63页

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