摘要 | 第1-5页 |
ABSTRACT | 第5-11页 |
符号说明 | 第11-12页 |
1 文献综述 | 第12-23页 |
·海洋生物活性物质和海洋药物研究现状 | 第12-13页 |
·海胆资源的研究现状 | 第13-14页 |
·多糖的研究概述 | 第14-22页 |
·多糖的分类及结构 | 第15-16页 |
·多糖的功能 | 第16页 |
·多糖的生物活性研究进展 | 第16-18页 |
·多糖的分离、提取工艺 | 第18-20页 |
·粗多糖的纯化工艺 | 第20-21页 |
·多糖纯度与分子量检测 | 第21-22页 |
·多糖含量的测定 | 第22页 |
·本课题立项依据、研究内容和创新点 | 第22-23页 |
·立项依据 | 第22-23页 |
·研究内容 | 第23页 |
·创新点 | 第23页 |
2 马粪海胆生殖腺营养成分含量测定 | 第23-34页 |
·引言 | 第23-24页 |
·实验材料、仪器及试剂 | 第24-25页 |
·实验材料 | 第24页 |
·实验仪器 | 第24页 |
·实验试剂 | 第24-25页 |
·实验方法 | 第25-30页 |
·样品处理 | 第25页 |
·水分测定 | 第25-26页 |
·灰分测定 | 第26页 |
·粗脂肪测定 | 第26-27页 |
·脂肪酸分析 | 第27页 |
·氨基酸分析 | 第27-28页 |
·蛋白质测定 | 第28页 |
·无机元素分析 | 第28-29页 |
·总糖测定 | 第29-30页 |
·实验结果 | 第30-34页 |
·营养成分 | 第30页 |
·脂肪酸组成 | 第30-32页 |
·氨基酸分析 | 第32-33页 |
·元素分析 | 第33-34页 |
·结论 | 第34页 |
3 HPCPS提取工艺研究 | 第34-43页 |
·引言 | 第34页 |
·实验材料、仪器及试剂 | 第34-35页 |
·实验材料 | 第35页 |
·实验仪器 | 第35页 |
·实验试剂 | 第35页 |
·实验方法 | 第35-38页 |
·HPCPS提取流程 | 第35-36页 |
·单因素实验 | 第36-37页 |
·正交实验 | 第37-38页 |
·实验结果 | 第38-43页 |
·单因素实验结果 | 第38-40页 |
·正交实验结构 | 第40-43页 |
·结论 | 第43页 |
4 HPPS提取、分离与纯化 | 第43-59页 |
·引言 | 第43-45页 |
·实验材料、仪器及试剂 | 第45-46页 |
·实验材料 | 第45页 |
·实验仪器 | 第45-46页 |
·实验试剂 | 第46页 |
·实验方法 | 第46-52页 |
·马粪海胆生殖腺含量测定 | 第46-47页 |
·脱脂 | 第47页 |
·浸提 | 第47页 |
·多糖含量的测定 | 第47页 |
·蛋白质含量的测定 | 第47-48页 |
·多糖脱蛋白 | 第48-49页 |
·多糖的脱色 | 第49-50页 |
·多糖的乙醇分级沉淀 | 第50页 |
·多糖的干燥 | 第50-51页 |
·HPPS的超滤纯化 | 第51页 |
·DEAE-52-阴离子交换纤维素对HPPS的纯化 | 第51页 |
·HPPS纯度与分子量检测 | 第51-52页 |
·实验结果 | 第52-59页 |
·马粪海胆生殖腺含量测定 | 第52页 |
·浸提 | 第52页 |
·多糖含量的测定 | 第52-53页 |
·蛋白质含量的测定 | 第53-54页 |
·脱蛋白 | 第54-55页 |
·醇分级沉淀 | 第55-56页 |
·不同干燥方法对多糖的影响 | 第56页 |
·HPPS的超滤 | 第56页 |
·DEAE-52-纤维素洗脱曲线 | 第56-58页 |
·HPPS纯度与分子量检测 | 第58-59页 |
·结论 | 第59页 |
5 碱提HPCPS的抗肿瘤活性 | 第59-65页 |
·引言 | 第59页 |
·实验材料、仪器及试剂 | 第59-60页 |
·实验材料 | 第59页 |
·实验仪器 | 第59-60页 |
·实验试剂 | 第60页 |
·实验方法 | 第60-62页 |
·碱提HPCPS的制备 | 第60页 |
·碱提HPCPS的细胞毒作用 | 第60-61页 |
·碱提HPCPS注射液对小鼠移植性肿瘤生长的抑制作用 | 第61-62页 |
·实验结果 | 第62-64页 |
·碱提HPCPS的细胞毒作用 | 第62-63页 |
·碱提HPCPS注射液对小鼠移植性肿瘤生长的抑制作用 | 第63-64页 |
·结论 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-70页 |
致谢 | 第70-71页 |
附录1 攻读学位期间发表的论文目录 | 第71-72页 |