| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 主要符号表 | 第9-10页 |
| 第一章 绪论 | 第10-22页 |
| 1.1 稀土上转换纳米材料的介绍 | 第10-11页 |
| 1.1.1 稀土元素介绍 | 第10-11页 |
| 1.1.2 稀土发光材料介绍 | 第11页 |
| 1.1.3 稀土发光纳米材料的介绍 | 第11页 |
| 1.2 稀土上转换纳米材料的发光机理 | 第11-13页 |
| 1.2.1 激发态吸收(ESA) | 第11-12页 |
| 1.2.2 双光子吸收(TPA) | 第12页 |
| 1.2.3 能量传递上转换(ETU) | 第12页 |
| 1.2.4 光子雪崩(PA) | 第12-13页 |
| 1.3 稀土上转换纳米材料的种类 | 第13-14页 |
| 1.3.1 卤化物系列 | 第13页 |
| 1.3.2 氧化物系列 | 第13-14页 |
| 1.3.3 氟氧化物系列 | 第14页 |
| 1.3.4 含硫化合物系列 | 第14页 |
| 1.4 稀土上转换纳米材料的制备 | 第14-15页 |
| 1.4.1 溶剂热/水热合成法 | 第14-15页 |
| 1.4.2 共沉淀法 | 第15页 |
| 1.4.3 溶胶-凝胶法 | 第15页 |
| 1.5 稀土上转换纳米材料在生物成像方面的应用 | 第15-20页 |
| 1.5.1 生物成像技术简介 | 第16-17页 |
| 1.5.2 靶向肿瘤成像 | 第17页 |
| 1.5.3 叶酸标记的UCNPs用于靶向肿瘤成像 | 第17-18页 |
| 1.5.4 肽标记的UCNPs用于靶向肿瘤成像 | 第18-19页 |
| 1.5.5 淋巴成像 | 第19页 |
| 1.5.6 血管成像 | 第19-20页 |
| 1.5.7 细胞成像分析 | 第20页 |
| 1.6 本论文的研究目的和主要内容 | 第20-22页 |
| 第二章 三种新型亲水性稀土上转换纳米材料的制备 | 第22-33页 |
| 2.1 引言 | 第22页 |
| 2.2 实验部分 | 第22-24页 |
| 2.2.1 实验仪器与试剂 | 第22-23页 |
| 2.2.2 亲水性K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5的制备及条件优化 | 第23页 |
| 2.2.3 亲水性NaYF_4:Yb~(3+),Er~(3+)UCNPs的制备 | 第23页 |
| 2.2.4 氨基功能化的SiO_2@KF-LaF_3:Er~(3+)/Tm~(3+)的制备 | 第23-24页 |
| 2.2.4.1 油溶性KF-LaF_3: Er~(3+)/Tm~(3+)的合成 | 第23-24页 |
| 2.2.4.2 氨基功能化的NH_2@SiO_2@KF-LaF_3: Er~(3+)/Tm~(3+)的合成 | 第24页 |
| 2.2.5 稀土纳米材料的表征 | 第24页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第24-32页 |
| 2.3.1 稀土纳米材料的红外光谱分析 | 第25-27页 |
| 2.3.2 稀土纳米材料的TEM谱分析 | 第27-29页 |
| 2.3.2.1 K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5的TEM谱分析 | 第27-28页 |
| 2.3.2.2 SiO_2@KF-LaF_3:Er~(3+)/Tm~(3+)和NaYF_4:Yb~(3+),Er~(3+)UCNPs的TEM谱分析 | 第28-29页 |
| 2.3.3 稀土纳米材料的XRD分析 | 第29-30页 |
| 2.3.4 稀土纳米材料的荧光光谱分析 | 第30-31页 |
| 2.3.4.1 三种亲水性稀土纳米材料的荧光光谱分析 | 第30页 |
| 2.3.4.2 K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5的荧光效果的优化 | 第30-31页 |
| 2.3.5 稀土纳米材料的机理讨论 | 第31-32页 |
| 2.4 本章小结 | 第32-33页 |
| 第三章 新型稀土上转换纳米材料在小鼠体内可视化荧光成像应用 | 第33-48页 |
| 3.1 引言 | 第33-34页 |
| 3.2 实验部分 | 第34-38页 |
| 3.2.1 实验仪器 | 第34页 |
| 3.2.2 细胞毒性测试 | 第34-35页 |
| 3.2.3 亲水性稀土纳米上转换材料的合成 | 第35-36页 |
| 3.2.3.1 亲水性K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5的制备 | 第35页 |
| 3.2.3.2 氨基功能化的SiO_2@KF-LaF_3:Er~(3+)/Tm~(3+)的制备 | 第35-36页 |
| 3.2.4 小鼠体内可视化荧光成像的穿透性实验 | 第36-37页 |
| 3.2.4.1 小鼠穿透性实验的准备工作 | 第36页 |
| 3.2.4.2 小鼠的荧光成像的穿透性实验 | 第36-37页 |
| 3.2.5 动物皮肤的异物探测实验 | 第37-38页 |
| 3.2.5.1 动物实验的准备工作 | 第37页 |
| 3.2.5.2 动物皮肤的异物探测实验 | 第37-38页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第38-47页 |
| 3.3.1 细胞毒性测试实验结果 | 第38-39页 |
| 3.3.2 三种亲水性稀土材料在小鼠体内的可视化荧光成像 | 第39页 |
| 3.3.3 小鼠荧光实验(氨基功能化的SiO_2@KF-LaF_3:Er~(3+)/Tm~(3+)) | 第39-41页 |
| 3.3.3.1 小鼠全身可视化荧光成像的穿透性实验(氨基功能化的SiO_2@KF-LaF_3:Er~(3+)/Tm~(3+)) | 第39-40页 |
| 3.3.3.2 小鼠全身荧光穿透性实验的条件探索(氨基功能化的SiO_2@KF-LaF_3:Er~(3+)/Tm~(3+)) | 第40-41页 |
| 3.3.4 小鼠荧光实验(K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5) | 第41-44页 |
| 3.3.4.1 不同浓度的K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5对小鼠荧光实验的影响 | 第41-42页 |
| 3.3.4.2 掺杂Mn~(2+)的K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5对小鼠荧光实验的影响 | 第42-43页 |
| 3.3.4.3 掺杂Mn~(2+)的K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5的发射机理图 | 第43-44页 |
| 3.3.5 动物皮肤异物探测实验 | 第44-47页 |
| 3.3.5.1 动物皮肤异物探测的实验原理 | 第44-45页 |
| 3.3.5.2 鸡肉皮肤的异物探测实验(K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5材料) | 第45-46页 |
| 3.3.5.3 活体小鼠的皮肤异物探测实验(K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5材料) | 第46-47页 |
| 3.4 本章小结 | 第47-48页 |
| 第四章 基于表面修饰PEG-400的K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5/Er~(3+)的稀土纳米材料在标记领域的应用 | 第48-62页 |
| 4.1 引言 | 第48-49页 |
| 4.2 实验部分 | 第49-51页 |
| 4.2.1 实验仪器与试剂 | 第49页 |
| 4.2.2 实验步骤 | 第49-51页 |
| 4.2.2.1 亲水性K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5的制备 | 第49-50页 |
| 4.2.2.2 聚乙烯醇(PVA)胶水的合成 | 第50页 |
| 4.2.2.3 基于亲水性K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5的稀土隐形墨水笔、悬臂式皮肤标记笔和PVA稀土胶水笔的制作 | 第50-51页 |
| 4.2.2.4 包含水溶性稀土材料K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5的温敏性PVA水凝胶标记膜的制作 | 第51页 |
| 4.2.2.5 温敏性PVA水凝胶标记膜的动物标记实验 | 第51页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第51-60页 |
| 4.3.1 K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5稀土水笔和稀土胶水的荧光性质 | 第52页 |
| 4.3.2 K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5稀土水笔和稀土胶水的持续性研究 | 第52-53页 |
| 4.3.3 K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5稀土水笔的应用 | 第53-55页 |
| 4.3.3.1 K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5稀土水笔的空白实验 | 第53-54页 |
| 4.3.3.2 K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5稀土水笔的应用实验 | 第54-55页 |
| 4.3.4 K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5稀土胶水的防伪标识设计 | 第55-56页 |
| 4.3.5 实验模型展示 | 第56-57页 |
| 4.3.6 包含稀土材料K_2Yb_(0.97)Er_(0.03)F_5的PVA水凝胶皮肤标记实验 | 第57-60页 |
| 4.3.6.1 实验原理 | 第57-58页 |
| 4.3.6.2 合成条件的研究 | 第58-59页 |
| 4.3.6.3 PVA水凝胶的动物皮肤标记实验 | 第59-60页 |
| 4.4 本章小结 | 第60-62页 |
| 结论与展望 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-73页 |
| 个人简历和发表论文 | 第73页 |
