| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 本文所用英文缩略词表和中文名称 | 第9-10页 |
| 第1章 绪论 | 第10-25页 |
| 1.1 拉曼光谱的发现与发展 | 第10-11页 |
| 1.1.1 拉曼光谱的发现 | 第10-11页 |
| 1.1.2 表面增强拉曼光谱的发现 | 第11页 |
| 1.2 表面增强拉曼平台的构建 | 第11-17页 |
| 1.2.1 拉曼标签 | 第11-12页 |
| 1.2.2 拉曼标签的组成 | 第12-17页 |
| 1.3 表面增强拉曼在生物分析中的运用 | 第17-24页 |
| 1.3.1 离子和分子的检测 | 第17-20页 |
| 1.3.2 病原体检测 | 第20页 |
| 1.3.3 癌症标志物检测 | 第20-22页 |
| 1.3.4 细胞内微环境检测 | 第22-23页 |
| 1.3.5 组织和活体的SERS成像 | 第23-24页 |
| 1.4 本文选题依据及研究内容 | 第24-25页 |
| 第2章 基于SWNT/DNA@AgNPs纳米复合材料的SERS放大检测 | 第25-40页 |
| 2.1 前言 | 第25-26页 |
| 2.2 实验部分 | 第26-29页 |
| 2.2.1 主要试剂和仪器 | 第26-27页 |
| 2.2.2 SWNT/sDNA@AgNPs纳米复合材料的构建 | 第27页 |
| 2.2.3 SERS选择性平台的构建 | 第27-28页 |
| 2.2.4 细胞和组织中miRNAs的提取 | 第28-29页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第29-38页 |
| 2.3.1 设计机理 | 第29-30页 |
| 2.3.2 SWNT/ssDNA@AgNPs纳米复合物的表征 | 第30-33页 |
| 2.3.3 纳米复合物合成条件的优化 | 第33-34页 |
| 2.3.4 ssDNA对纳米复合材料SERS信号增强的考察 | 第34-35页 |
| 2.3.5 硅球表面SERS检测纳米平台的构建 | 第35-36页 |
| 2.3.6 溶液中miRNA的检测 | 第36-37页 |
| 2.3.7 组织和细胞中miR-21的检测 | 第37-38页 |
| 2.4 小结 | 第38-40页 |
| 第3章 基于离子诱导聚集与杂交链反应超灵敏检测miRNA | 第40-51页 |
| 3.1 前言 | 第40-41页 |
| 3.2 实验部分 | 第41-43页 |
| 3.2.1 主要试剂和仪器 | 第41-42页 |
| 3.2.2 银纳米颗粒的制备 | 第42页 |
| 3.2.3 60nm的金纳米颗粒的制备 | 第42页 |
| 3.2.4 拉曼探针的制备 | 第42页 |
| 3.2.5 硅球预处理 | 第42页 |
| 3.2.6 硅球上HCR反应过程 | 第42-43页 |
| 3.2.7 银纳米颗粒的修饰 | 第43页 |
| 3.2.8 粒子聚集诱导SESR信号检测 | 第43页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第43-50页 |
| 3.3.1 设计机理 | 第43-44页 |
| 3.3.2 拉曼探针的表征 | 第44-46页 |
| 3.3.3 Ag~+离子诱导聚集拉曼信号检测 | 第46页 |
| 3.3.4 硅球上HCR-AgNPs的构建 | 第46-47页 |
| 3.3.5 HCR-AgNPs体系用于miR-21检测的可行性分析 | 第47-48页 |
| 3.3.6 实验条件的优化 | 第48页 |
| 3.3.7 溶液中miR-21的测定及选择性分析 | 第48-50页 |
| 3.4 小结 | 第50-51页 |
| 结论与展望 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-60页 |
| 附录攻读学位期间发表的学术论文 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
