| 本论文创新点 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 目录 | 第10-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-48页 |
| 1.1 量子点 | 第14-26页 |
| 1.1.1 量子点的光学性质 | 第14-15页 |
| 1.1.2 量子点的制备方法 | 第15-17页 |
| 1.1.2.1 有机相制备法 | 第15页 |
| 1.1.2.2 水相制备法 | 第15-17页 |
| 1.1.2.2.1 回流法 | 第16页 |
| 1.1.2.2.2 水热法 | 第16页 |
| 1.1.2.2.3 微波法 | 第16-17页 |
| 1.1.3 量子点的生物分析应用 | 第17-21页 |
| 1.1.3.1 DNA修饰的量子点用于DNA检测 | 第18-19页 |
| 1.1.3.2 DNA修饰的量子点用于小分子和蛋白质检测 | 第19-20页 |
| 1.1.3.3 DNA修饰的量子点用于细胞成像 | 第20-21页 |
| 1.1.4 常见的DNA修饰量子点方法 | 第21-24页 |
| 1.1.4.1 静电吸附 | 第21-22页 |
| 1.1.4.2 共价偶联 | 第22页 |
| 1.1.4.3 特异性作用 | 第22-24页 |
| 1.1.5 一步法制备DNA功能化的量子点 | 第24-26页 |
| 1.2 氧化石墨烯 | 第26-34页 |
| 1.2.1 基于氧化石墨烯的DNA检测 | 第26-29页 |
| 1.2.1.1. 荧光法 | 第26-28页 |
| 1.2.1.2 电分析法 | 第28-29页 |
| 1.2.2 基于氧化石墨烯的蛋白质分析 | 第29-31页 |
| 1.2.3 基于氧化石墨烯的生物小分子和重金属离子检测 | 第31-34页 |
| 1.2.3.1 基于氧化石墨烯的生物小分子检测 | 第31-32页 |
| 1.2.3.2 基于氧化石墨烯的重金属离子检测 | 第32-34页 |
| 1.3 本论文立题思想及主要研究内容 | 第34-35页 |
| 参考文献 | 第35-48页 |
| 第二章 适配体功能化的CdTe：Zn~(2+)量子点及其肿瘤靶向荧光成像研究 | 第48-66页 |
| 2.1 引言 | 第48-49页 |
| 2.2 实验部分 | 第49-51页 |
| 2.2.1 试剂与材料 | 第49页 |
| 2.2.2 DNA功能化锌离子掺杂CdTe量子点的制备 | 第49-50页 |
| 2.2.3 DNA-QDs与互补DNA的杂交 | 第50页 |
| 2.2.4 细胞毒性实验 | 第50页 |
| 2.2.5 DNA-QDs用于体内外肿瘤靶向成像 | 第50-51页 |
| 2.2.6 仪器与表征 | 第51页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第51-61页 |
| 2.3.1 DNA-QDs晶体结构和水合粒径的表征 | 第52页 |
| 2.3.2 CdTe：Zn~(2+)量子点表面DNA的实用性 | 第52-53页 |
| 2.3.3 DNA功能化QDs前后紫外-可见吸收光谱和荧光光谱比较 | 第53-54页 |
| 2.3.4 DNA-QDs的光学性质 | 第54-56页 |
| 2.3.5 量子点表面DNA数目的调控 | 第56-57页 |
| 2.3.6 细胞毒性实验 | 第57-58页 |
| 2.3.7 适配体与MUC1相互作用研究 | 第58-59页 |
| 2.3.8 体内外靶向成像 | 第59-61页 |
| 2.4 小结 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-66页 |
| 第三章 DNA-CdTe：Zn~(2+)量子点的制备及其用于HIV DNA的检测 | 第66-86页 |
| 3.1 引言 | 第66-67页 |
| 3.2 实验部分 | 第67-68页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第67页 |
| 3.2.2 DNA-QDs的制备 | 第67-68页 |
| 3.2.3 细胞毒性的考察 | 第68页 |
| 3.2.4 HIV DNA的检测 | 第68页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第68-82页 |
| 3.3.1 DNA-QDs制备路线 | 第68-69页 |
| 3.3.2 CdTe:Zn~(2+)量子点(QDs)制备条件的优化 | 第69-71页 |
| 3.3.3 DNA-QDs的光学性质 | 第71-72页 |
| 3.3.4 量子点表面所修饰DNA的实用性考察 | 第72页 |
| 3.3.5 DNA-QDs表面DNA量的调控 | 第72-74页 |
| 3.3.6 DNA-QDs的纳米特性表征 | 第74-76页 |
| 3.3.7 DNA-QDs和CdTe量子点的光稳定性比较 | 第76页 |
| 3.3.8 细胞毒性测定 | 第76-77页 |
| 3.3.9 pH对DNA-QDs荧光强度的影响 | 第77-78页 |
| 3.3.10 离子强度对DNA-QDs的影响 | 第78-79页 |
| 3.3.11 双色DNA-QDs的紫外-可见吸收光谱及荧光光谱 | 第79页 |
| 3.3.12 HIV DNA的检测原理 | 第79-80页 |
| 3.3.13 基于双色DNA-QDs与GO之间FRET检测HIV DNA | 第80-82页 |
| 3.3.14 碱基错配分析 | 第82页 |
| 3.4 小结 | 第82页 |
| 参考文献 | 第82-86页 |
| 第四章 基于量子点—氧化石墨烯荧光共振能量转移分析检测SV40抗体 | 第86-98页 |
| 4.1 引言 | 第86-87页 |
| 4.2 实验部分 | 第87-88页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第87页 |
| 4.2.2 SVLP-QDs的制备 | 第87页 |
| 4.2.3 氧化石墨烯(GO)的制备 | 第87页 |
| 4.2.4 血清中SV40抗体的检测 | 第87-88页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第88-94页 |
| 4.3.1 实验原理 | 第88-89页 |
| 4.3.2 SVLP-QDs的透射电镜表征 | 第89-90页 |
| 4.3.3 GO的表征 | 第90-91页 |
| 4.3.4 FRET免疫分析特性 | 第91-94页 |
| 4.3.5 特异性考察 | 第94页 |
| 4.4 小结 | 第94页 |
| 参考文献 | 第94-98页 |
| 第五章 基于上转换纳米材料—氧化石墨烯荧光共振能量转移检测葡萄糖 | 第98-115页 |
| 5.1 引言 | 第98页 |
| 5.2 实验部分 | 第98-101页 |
| 5.2.1 试剂与材料 | 第98-99页 |
| 5.2.3 仪器 | 第99页 |
| 5.2.4 实验方法 | 第99-101页 |
| 5.2.4.1 聚丙烯酸修饰的NaYF_4：Yb,Er纳米颗粒的制备 | 第99页 |
| 5.2.4.2 ConA修饰UCP的制备 | 第99-100页 |
| 5.2.4.3 CS修饰GO的制备 | 第100页 |
| 5.2.4.4 血清的预处理 | 第100页 |
| 5.2.4.5 检测葡萄糖 | 第100页 |
| 5.2.4.6 检测单链DNA | 第100-101页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第101-112页 |
| 5.3.1 实验原理 | 第101页 |
| 5.3.2 UCP纳米晶和GO的XRD表征 | 第101-103页 |
| 5.3.3 UCP-ConA、GO-CS及其复合物的表征 | 第103-104页 |
| 5.3.4 UCP与GO之间的能量转移 | 第104-108页 |
| 5.3.5 血清中葡萄糖的检测 | 第108-109页 |
| 5.3.6 特异性实验 | 第109-110页 |
| 5.3.7 检测单链DNA | 第110-112页 |
| 5.4 小结 | 第112页 |
| 参考文献 | 第112-115页 |
| 附录1 主要缩写词表(按字母顺序排列) | 第115-116页 |
| 附录2 攻读博士学位期间发表的科研论文目录 | 第116-118页 |
| 致谢 | 第118页 |
