| 缩略语表 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 文献回顾 | 第16-32页 |
| 一、胃癌的流行现状 | 第16-19页 |
| 二、胃癌的诊断现状 | 第19-21页 |
| 三、共聚焦激光显微内镜 | 第21-25页 |
| 四、消化道肿瘤研究中的探针和靶向肽SNFYMPL的发现 | 第25-32页 |
| 1、抗体探针 | 第27-28页 |
| 2、短肽探针 | 第28-32页 |
| 第一部分 SNF~*-FITC短肽荧光探针的合成及与胃癌细胞结合能力检测 | 第32-47页 |
| 引言 | 第32-33页 |
| 1 材料 | 第33-35页 |
| 1.1 细胞株 | 第33页 |
| 1.2 主要试剂 | 第33-34页 |
| 1.3 主要仪器 | 第34-35页 |
| 2 方法 | 第35-41页 |
| 2.1 短肽荧光探针和其他短肽制品的制备和检测 | 第35-37页 |
| 2.2 细胞培养相关技术（复苏、培养传代、冻存和计数） | 第37-38页 |
| 2.3 细胞荧光染色 | 第38-39页 |
| 2.4 细胞免疫化学染色和竞争结合实验 | 第39-40页 |
| 2.5 荧光激活细胞分选 | 第40-41页 |
| 3 结果 | 第41-45页 |
| 3.1 SNF~*-FITC荧光探针的制备和检测 | 第41-43页 |
| 3.2 细胞荧光染色实验 | 第43-44页 |
| 3.3 细胞的免疫化学染色 | 第44页 |
| 3.4 荧光激活细胞分选检测 | 第44-45页 |
| 4 讨论 | 第45-47页 |
| 第二部分 SNF~*-FITC短肽荧光探针与胃癌组织结合能力检测 | 第47-55页 |
| 引言 | 第47页 |
| 1 材料 | 第47-49页 |
| 1.1 胃癌组织标本 | 第47-48页 |
| 1.2 主要试剂和耗材 | 第48页 |
| 1.3 主要仪器 | 第48-49页 |
| 2 方法 | 第49-50页 |
| 2.1 快速冰冻切片组织荧光染色 | 第49页 |
| 2.2 新鲜胃癌组织块的荧光染色 | 第49-50页 |
| 3 结果 | 第50-53页 |
| 3.1 组织切片的荧光染色 | 第50-52页 |
| 3.2 组织块的荧光染色 | 第52-53页 |
| 4 讨论 | 第53-55页 |
| 第三部分 SNF~*-FITC的胃癌动物模型活体成像 | 第55-61页 |
| 引言 | 第55页 |
| 1 材料 | 第55-57页 |
| 1.1 细胞株和实验动物 | 第55-56页 |
| 1.2 主要试剂 | 第56页 |
| 1.3 主要仪器 | 第56-57页 |
| 2 方法 | 第57-58页 |
| 2.1 细胞培养 | 第57页 |
| 2.2 荷瘤裸鼠模型的建立 | 第57-58页 |
| 2.3 小动物活体荧光成像 | 第58页 |
| 3 结果 | 第58-59页 |
| 4 讨论 | 第59-61页 |
| 小结 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-69页 |
| 个人简历和研究成果 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
