| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 绪论 | 第10-24页 |
| 1.1 植物遗传多样性的概念 | 第10页 |
| 1.2 植物遗传多样性的研究意义 | 第10页 |
| 1.3 遗传多样性的研究方法 | 第10-19页 |
| 1.3.1 形态学标记 | 第10-11页 |
| 1.3.2 细胞学标记 | 第11-12页 |
| 1.3.3 生化标记 | 第12页 |
| 1.3.3.1 同工酶标记 | 第12页 |
| 1.3.3.2 蛋白质组学标记 | 第12页 |
| 1.3.4 DNA分子标记 | 第12-19页 |
| 1.3.4.1 RFLP标记 | 第13-14页 |
| 1.3.4.2 RAPD 标记 | 第14-15页 |
| 1.3.4.3 AFLP标记 | 第15-16页 |
| 1.3.4.4 ISSR标记 | 第16-17页 |
| 1.3.4.5 SRAP标记 | 第17-18页 |
| 1.3.4.6 SSR标记 | 第18-19页 |
| 1.4 延胡索的研究进展 | 第19-23页 |
| 1.4.1 延胡索植物概述 | 第19-20页 |
| 1.4.2 延胡索的生物学特征 | 第20页 |
| 1.4.3 延胡索的地理分布 | 第20页 |
| 1.4.4 延胡索的研究现状 | 第20-23页 |
| 1.4.4.1 延胡索的有效成分研究 | 第21-22页 |
| 1.4.4.2 延胡索药理活性研究 | 第22页 |
| 1.4.4.3 延胡索的其他方面的研究 | 第22-23页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第23-24页 |
| 第2章 延胡索DNA提取方法的优化 | 第24-32页 |
| 2.1 实验材料 | 第24页 |
| 2.2 仪器与试剂 | 第24-25页 |
| 2.3 实验方法 | 第25-27页 |
| 2.3.1 主要试剂的配制 | 第25-26页 |
| 2.3.2 DNA提取方法 | 第26-27页 |
| 2.3.3 DNA的检测方法 | 第27页 |
| 2.4 结果与分析 | 第27-30页 |
| 2.4.1 四种方法对延胡索不同部位DNA提取结果分析 | 第27-30页 |
| 2.4.2 四种方法对延胡索不同部位DNA提取的凝胶电泳分析 | 第30页 |
| 2.5 讨论 | 第30-31页 |
| 2.6 本章小结 | 第31-32页 |
| 第3章 延胡索SSR引物的开发 | 第32-40页 |
| 3.1 实验材料 | 第32-33页 |
| 3.2 实验方法 | 第33-36页 |
| 3.2.1 主要试剂的配制 | 第33页 |
| 3.2.2 DNA提取方法 | 第33-34页 |
| 3.2.3 PCR扩增反应体系的建立 | 第34-36页 |
| 3.2.3.1 引物的开发流程 | 第34页 |
| 3.2.3.2 设计的延胡索引物 | 第34-36页 |
| 3.2.3.3 延胡索的PCR扩增反应体系 | 第36页 |
| 3.2.4 聚丙烯酰胺凝胶电泳检测 | 第36页 |
| 3.3 实验结果 | 第36-38页 |
| 3.4 延胡索引物的筛选结果 | 第38-39页 |
| 3.5 本章小结 | 第39-40页 |
| 第4章 延胡索种群遗传多样性的SSR分析 | 第40-54页 |
| 4.1 实验材料 | 第40-41页 |
| 4.1.1 延胡索居群样品的采集 | 第40-41页 |
| 4.1.2 实验试剂与仪器 | 第41页 |
| 4.2 实验方法 | 第41-43页 |
| 4.2.1 主要试剂的配制 | 第41页 |
| 4.2.2 延胡索总DNA的提取 | 第41页 |
| 4.2.3 PCR扩增反应体系的建立 | 第41-42页 |
| 4.2.4 聚丙烯酰胺凝胶电泳检测 | 第42页 |
| 4.2.5 数据分析 | 第42-43页 |
| 4.3 结果与分析 | 第43-49页 |
| 4.3.1 物种和居群水平的遗传多样性 | 第43-46页 |
| 4.3.2 遗传分化和地理结构 | 第46-49页 |
| 4.4 讨论 | 第49-51页 |
| 4.4.1 延胡索的遗传多样性 | 第49页 |
| 4.4.2 延胡索的遗传结构 | 第49-51页 |
| 4.5 保护策略 | 第51-54页 |
| 结论 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-64页 |
| 攻读硕士学位期间学术成果 | 第64-66页 |
| 致谢 | 第66页 |