| 摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 引言 | 第8-11页 |
| 材料与方法 | 第11-35页 |
| 1 实验材料 | 第11-15页 |
| 1.1 实验主要耗材和设备 | 第11-12页 |
| 1.2 实验主要试剂 | 第12-14页 |
| 1.3 细胞系 | 第14页 |
| 1.4 实验动物 | 第14页 |
| 1.5 放射性 125I粒子 | 第14-15页 |
| 2 实验方法 | 第15-34页 |
| 2.1 细胞培养 | 第15-17页 |
| 2.1.1 细胞复苏 | 第15页 |
| 2.1.2 细胞传代 | 第15-16页 |
| 2.1.3 细胞计数 | 第16页 |
| 2.1.4 细胞冻存 | 第16页 |
| 2.1.5 台盼蓝染色活细胞计数 | 第16-17页 |
| 2.2 动物模型的构建 | 第17页 |
| 2.3 荷瘤鼠的分组及粒子植入 | 第17-18页 |
| 2.4 计算肿瘤抑制率及肿瘤标本的采集 | 第18-19页 |
| 2.5 石蜡包埋 | 第19-20页 |
| 2.6 HE染色 | 第20-21页 |
| 2.7 免疫组织化学SP法 | 第21-23页 |
| 2.8 TUNEL法 | 第23-25页 |
| 2.9 RNA提取和qRT-PCR | 第25-29页 |
| 2.10 Western blot | 第29-34页 |
| 3 统计学处理 | 第34-35页 |
| 结果 | 第35-47页 |
| 1 裸鼠肺腺癌移植瘤动物模型 | 第35页 |
| 2 粒子植入后的抑瘤效应 | 第35-37页 |
| 3 病理组织学检查 | 第37-38页 |
| 4 CD34和KI-67 免疫组化结果 | 第38-41页 |
| 4.1 免疫组织化学S-P法检测肿瘤组织MVD | 第38-39页 |
| 4.2 免疫组织化学S-P法检测肿瘤组织KI-67 蛋白 | 第39-41页 |
| 5 TUNEL检测结果 | 第41-42页 |
| 6 RNA提取和VEGF、HIF-1α基因的RT-PCR结果 | 第42-44页 |
| 6.1 RNA纯度和质量分析 | 第42-43页 |
| 6.2 VEGF、HIF-1α基因在MRNA水平的表达 | 第43-44页 |
| 7 肿瘤组织中VEGF和HIF-1α的蛋白表达结果 | 第44-46页 |
| 8 裸鼠瘤组织中VEGF和HIF-1α的MRNA、蛋白表达的相关性 | 第46-47页 |
| 讨论 | 第47-51页 |
| 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-55页 |
| 综述 | 第55-65页 |
| 综述参考文献 | 第62-65页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第65-66页 |
| 缩略词表 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
