| 中文摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 英文缩略词表 | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-20页 |
| 1 盐酸二甲双胍的药理作用研究进展 | 第15-17页 |
| 1.1 盐酸二甲双胍的抗阿尔兹海默症作用 | 第15-16页 |
| 1.2 盐酸二甲双胍的抗肿瘤作用 | 第16页 |
| 1.3 盐酸二甲双胍相关载体或剂型研究 | 第16-17页 |
| 2 冰片促进药物透过血脑屏障的研究进展 | 第17页 |
| 3 微乳的研究进展 | 第17-19页 |
| 3.1 微乳的组成、分类及制备方法 | 第17-18页 |
| 3.2 微乳的应用 | 第18-19页 |
| 4 课题设计 | 第19-20页 |
| 第一章 冰片-盐酸二甲双胍W/O/W亚微乳的处方前研究 | 第20-28页 |
| 1 仪器与材料 | 第20页 |
| 1.1 仪器 | 第20页 |
| 1.2 材料 | 第20页 |
| 2 实验方法与结果 | 第20-26页 |
| 2.1 盐酸二甲双胍体外分析方法的建立 | 第20-24页 |
| 2.1.1 检测波长 | 第20-21页 |
| 2.1.2 色谱条件 | 第21页 |
| 2.1.3 对照品储备液的配制 | 第21页 |
| 2.1.4 专属性试验 | 第21页 |
| 2.1.5 标准曲线 | 第21-22页 |
| 2.1.6 精密度试验 | 第22-23页 |
| 2.1.7 回收率试验 | 第23页 |
| 2.1.8 重复性试验 | 第23-24页 |
| 2.2 盐酸二甲双胍的稳定性 | 第24页 |
| 2.3 包封率测定方法的建立 | 第24-26页 |
| 2.3.1 超滤离心管截留分子量的选择 | 第24-25页 |
| 2.3.2 膜透过率的测定 | 第25-26页 |
| 2.3.3 加样回收率 | 第26页 |
| 2.3.4 包封率的测定 | 第26页 |
| 3 讨论 | 第26-27页 |
| 4 本章小结 | 第27-28页 |
| 第二章 B-Met-W/O/W亚微乳的制备工艺及处方研究 | 第28-36页 |
| 1 仪器与材料 | 第28页 |
| 1.1 主要仪器 | 第28页 |
| 1.2 试药 | 第28页 |
| 2 方法与结果 | 第28-35页 |
| 2.1 亚微乳制备方法的选择 | 第28-29页 |
| 2.2 单因素考察W/O亚微乳的制备处方和工艺研究 | 第29-32页 |
| 2.2.1 W/O亚微乳表面活性剂种类的选择 | 第29页 |
| 2.2.2 W/O亚微乳助表面活性剂种类的选择 | 第29-30页 |
| 2.2.3 油相的选择 | 第30页 |
| 2.2.4 Km值对W/O亚微乳形成的影响 | 第30-31页 |
| 2.2.5 温度的选择 | 第31页 |
| 2.2.6 滴入速度的选择 | 第31页 |
| 2.2.7 搅拌速度的选择 | 第31-32页 |
| 2.2.8 W/O亚微乳最优处方相图的绘制 | 第32页 |
| 2.3 单因素考察W/O/W亚微乳的制备处方和工艺研究 | 第32-35页 |
| 2.3.1 W/OW亚微乳表面活性剂种类的选择 | 第32-33页 |
| 2.3.2 W/O/W SE助表面活性剂种类的选择 | 第33页 |
| 2.3.3 Km值得选择 | 第33页 |
| 2.3.4 滴入速度及温度的选择 | 第33-34页 |
| 2.3.5 搅拌速度的选择 | 第34页 |
| 2.3.6 W/O/W亚微乳最优处方相图的绘制 | 第34-35页 |
| 3 讨论 | 第35页 |
| 4 本章小结 | 第35-36页 |
| 第三章 B-Met-W/O/W亚微乳的体外评价 | 第36-46页 |
| 1 仪器与材料 | 第36页 |
| 1.1 仪器 | 第36页 |
| 1.2 材料 | 第36页 |
| 2 方法与结果 | 第36-45页 |
| 2.1 外观 | 第36-37页 |
| 2.2 粒径和粒径分布 | 第37-38页 |
| 2.3 形态观察 | 第38页 |
| 2.4 差热分析 | 第38-39页 |
| 2.5 红外分析 | 第39页 |
| 2.6 包封率 | 第39-40页 |
| 2.7 制剂稳定性研究 | 第40页 |
| 2.8 体外释放特性 | 第40-45页 |
| 2.8.1 HPLC色谱条件 | 第40页 |
| 2.8.2 释放介质的选择 | 第40页 |
| 2.8.3 标准曲线绘制 | 第40-41页 |
| 2.8.4 日内、日间精密度考查 | 第41-42页 |
| 2.8.5 回收率考察 | 第42页 |
| 2.8.6 体外释药性的研究 | 第42-44页 |
| 2.8.7 体外释放曲线拟合 | 第44-45页 |
| 3 讨论 | 第45页 |
| 4 本章小结 | 第45-46页 |
| 第四章 B-Met-W/O/W SE在大鼠体内的初步药代动力学研究 | 第46-69页 |
| 第一节 Met生物样品分析方法的确立 | 第46-61页 |
| 1 仪器与材料 | 第46-47页 |
| 1.1 试药 | 第46-47页 |
| 1.2 仪器 | 第47页 |
| 1.3 实验动物 | 第47页 |
| 2 方法和结果 | 第47-61页 |
| 2.1 血浆样本中Met含量测定方法 | 第47-51页 |
| 2.1.1 色谱条件 | 第47页 |
| 2.1.2 对照品溶液和内标液的制备 | 第47页 |
| 2.1.3 血浆样品的处理方法 | 第47-48页 |
| 2.1.4 专属性考察 | 第48页 |
| 2.1.5 血浆中标准曲线及定量下限 | 第48-49页 |
| 2.1.6 提取回收率试验 | 第49-50页 |
| 2.1.7 精密度和准确度 | 第50-51页 |
| 2.1.8 血浆稳定性考察 | 第51页 |
| 2.2 组织样品中Met的含量测定方法 | 第51-61页 |
| 2.2.1 色谱条件 | 第51-52页 |
| 2.2.2 组织样品的处理方法 | 第52页 |
| 2.2.3 专属性考察 | 第52-55页 |
| 2.2.4 标准曲线 | 第55-58页 |
| 2.2.5 定量下限 | 第58页 |
| 2.2.6 精密度和准确度 | 第58-60页 |
| 2.2.7 各组织样品稳定性考察 | 第60-61页 |
| 第二节 B-Met-W/O/W SE大鼠体内初步药动学研究 | 第61-69页 |
| 1 仪器和材料 | 第61页 |
| 1.1 仪器 | 第61页 |
| 1.2 试药 | 第61页 |
| 1.3 实验动物 | 第61页 |
| 2 方法和结果 | 第61-67页 |
| 2.1 血浆药动学参数研究 | 第61-63页 |
| 2.1.1 实验动物分组 | 第62页 |
| 2.1.2 给药方式及样品采集 | 第62页 |
| 2.1.3 血药浓度测定结果 | 第62-63页 |
| 2.1.3.1 药时曲线的绘制 | 第62-63页 |
| 2.1.3.2 药动学参数分析 | 第63页 |
| 2.2 组织分布实验 | 第63-67页 |
| 2.2.1 实验动物分组 | 第63页 |
| 2.2.2 给药方式及样本采集 | 第63-64页 |
| 2.2.3 组织分布测定结果 | 第64-67页 |
| 3 讨论 | 第67-68页 |
| 4 本章小结 | 第68-69页 |
| 全文总结 | 第69-71页 |
| 参考文献 | 第71-76页 |
| 综述 | 第76-85页 |
| 参考文献 | 第81-85页 |
| 作者简介 | 第85-86页 |
| 攻读学位期间发表论文 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87页 |
