摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-10页 |
第1章 绪论 | 第14-25页 |
1.1 纳米纤维 | 第14-19页 |
1.1.1 纳米纤维的含义 | 第14页 |
1.1.2 纳米纤维的制备方法 | 第14-18页 |
1.1.3 纳米纤维的应用 | 第18-19页 |
1.2 固定化酶 | 第19-23页 |
1.2.1 酶固定化的载体材料 | 第19-20页 |
1.2.2 脂肪酶 | 第20-21页 |
1.2.3 脂肪酶的固定化方法 | 第21-23页 |
1.3 本课题的研究意义及主要内容 | 第23-25页 |
1.3.1 本课题的研究意义 | 第23页 |
1.3.2 本课题的主要内容 | 第23-25页 |
第2章 含环氧基高分子聚合物的制备与表征 | 第25-34页 |
2.1 引言 | 第25页 |
2.2 实验试剂与仪器 | 第25-26页 |
2.2.1 实验试剂 | 第25页 |
2.2.2 实验仪器 | 第25-26页 |
2.3 实验方法 | 第26-28页 |
2.3.1 含环氧基P(GMA-co-MA)-g-PEO共聚物的制备 | 第26页 |
2.3.2 聚合物的纯化及转化率测试 | 第26-27页 |
2.3.3 聚合物特性粘数的测定 | 第27页 |
2.3.4 聚合物合成条件的优化 | 第27-28页 |
2.3.5 含环氧基高分子聚合物的结构表征 | 第28页 |
2.4 结果与讨论 | 第28-33页 |
2.4.1 聚合物制备影响因素分析 | 第28-31页 |
2.4.2 聚合物表征 | 第31-33页 |
2.5 本章小结 | 第33-34页 |
第3章 含环氧基纳米纤维膜P(GMA-co-MA)-g-PEO酶载体的制备 | 第34-40页 |
3.1 引言 | 第34页 |
3.2 实验试剂与仪器 | 第34页 |
3.2.1 实验试剂 | 第34页 |
3.2.2 实验仪器 | 第34页 |
3.3 实验方法 | 第34-36页 |
3.3.1 静电纺丝 | 第34-36页 |
3.3.2 纺丝工艺对载体形貌的影响 | 第36页 |
3.3.3 载体的形貌与直径测试 | 第36页 |
3.3.4 载体的性能测试 | 第36页 |
3.4 结果与讨论 | 第36-39页 |
3.4.1 纺丝工艺对载体纤维直径及形貌的影响 | 第36-38页 |
3.4.2 聚合物单体含量对力学性能的影响 | 第38-39页 |
3.4.3 聚合物单体含量对亲水性能的影响 | 第39页 |
3.5 实验小结 | 第39-40页 |
第4章 含环氧基共聚物与羽毛多肽复合纳米纤维膜酶载体的制备 | 第40-48页 |
4.1 引言 | 第40页 |
4.2 实验试剂与仪器 | 第40页 |
4.2.1 实验试剂 | 第40页 |
4.2.2 实验仪器 | 第40页 |
4.3 实验方法 | 第40-42页 |
4.3.1 羽毛多肽的制备 | 第40-41页 |
4.3.2 静电纺丝复合纳米纤维膜酶载体的制备 | 第41-42页 |
4.3.3 载体的结构与形态表征 | 第42页 |
4.3.4 载体的性能测试 | 第42页 |
4.4 结果与讨论 | 第42-47页 |
4.4.1 羽毛多肽含量对载体形态的影响 | 第42-44页 |
4.4.2 载体的结构表征 | 第44-45页 |
4.4.3 载体的力学性能测试 | 第45-46页 |
4.4.4 载体的吸水性能测试 | 第46-47页 |
4.5 实验小结 | 第47-48页 |
第5章 脂肪酶的固定化 | 第48-65页 |
5.1 引言 | 第48页 |
5.2 实验试剂与仪器 | 第48页 |
5.2.1 实验试剂 | 第48页 |
5.2.2 实验仪器 | 第48页 |
5.3 实验方法 | 第48-55页 |
5.3.1 载酶量的测定 | 第48-51页 |
5.3.2 酶的活性测定 | 第51-52页 |
5.3.3 酶的固定化 | 第52页 |
5.3.4 脂肪酶反应动力学常数的测定 | 第52页 |
5.3.5 脂肪酶固定的影响因素分析 | 第52-53页 |
5.3.6 固定化酶的结构与形貌表征 | 第53页 |
5.3.7 固定化酶催化最佳反应条件的测定 | 第53-54页 |
5.3.8 固定化酶稳定性分析 | 第54-55页 |
5.4 结果与讨论 | 第55-64页 |
5.4.1 含环氧基纳米纤维膜的固定化工芝 | 第55-57页 |
5.4.2 含环氧基/羽毛多肽复合纳米纤维膜的固定化工艺 | 第57-59页 |
5.4.3 脂肪酶反应动力学常数的测定 | 第59-60页 |
5.4.4 固定化酶催化最适条件 | 第60-62页 |
5.4.5 固定化酶的稳定性 | 第62-64页 |
5.5 实验小结 | 第64-65页 |
第6章 固定化酶在有机合成中的应用研究 | 第65-72页 |
6.1 引言 | 第65页 |
6.2 实验试剂与仪器 | 第65页 |
6.2.1 实验试剂 | 第65页 |
6.2.2 实验仪器 | 第65页 |
6.3 实验方法 | 第65-67页 |
6.3.1 酶催化2-溴苯乙酮-水杨醛的有机反应 | 第65-66页 |
6.3.2 产物的分离与纯化 | 第66页 |
6.3.3 产物的转化率 | 第66-67页 |
6.3.4 合成条件的优化 | 第67页 |
6.3.5 产物的结构表征 | 第67页 |
6.4 结果与讨论 | 第67-71页 |
6.4.1 杂环合成条件的优化 | 第67-70页 |
6.4.2 产物的核磁表征 | 第70-71页 |
6.5 本章小结 | 第71-72页 |
第7章 结论与展望 | 第72-75页 |
7.1 主要结论 | 第72-74页 |
7.2 展望 | 第74-75页 |
参考文献 | 第75-81页 |
攻读学位期间发表的论文及专利申请目录 | 第81-82页 |
致谢 | 第82页 |