| 英文缩略词表 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| 英文摘要 | 第8-9页 |
| 前言 | 第10-13页 |
| 材料和方法 | 第13-26页 |
| 1. 材料 | 第13-17页 |
| 1.1 实验动物 | 第13页 |
| 1.2 主要仪器和设备 | 第13页 |
| 1.3 常用试剂配制及保存 | 第13-14页 |
| 1.4 胎鼠延髓神经元培养所需试剂 | 第14页 |
| 1.5 神经元活性测定所需试剂 | 第14页 |
| 1.6 神经元鉴定所需试剂 | 第14-15页 |
| 1.7 ROS测定所需试剂 | 第15页 |
| 1.8 Real-time PCR所需试剂 | 第15-16页 |
| 1.9 总SOD活性检测所需试剂 | 第16页 |
| 1.10 神经元胞内钙的测定 | 第16-17页 |
| 2. 实验方法 | 第17-25页 |
| 2.1 胎鼠原代延髓神经元培养 | 第17页 |
| 2.2 神经元的鉴定 | 第17-18页 |
| 2.3 谷氨酸能神经元的鉴定 | 第18页 |
| 2.4 神经元活性的鉴定 | 第18-19页 |
| 2.5 神经元胞内ROS水平测定 | 第19页 |
| 2.6 CBS在延髓神经元表达 | 第19页 |
| 2.7 Real-time PCR测定CBS mRNA | 第19-22页 |
| 2.8 延髓神经元总SOD的测定(WST法) | 第22-24页 |
| 2.9 神经元胞内钙浓度的测定 | 第24-25页 |
| 3. 实验数据统计处理 | 第25-26页 |
| 结果 | 第26-52页 |
| 第一部分 H_2S抑制Ang Ⅱ引起的延髓神经元ROS水平的升高 | 第26-41页 |
| 1. Ang Ⅱ升高延髓神经元ROS水平及可能机制 | 第26-34页 |
| 1.1 鉴定原代培养延髓神经元 | 第26-28页 |
| 1.2 原代培养谷氨酸能神经元的鉴定 | 第28-29页 |
| 1.3 Ang Ⅱ引起延髓神经元ROS水平的升高 | 第29-31页 |
| 1.4 AngⅡ升高延髓神经元ROS水平的可能机制 | 第31-34页 |
| 1.4.1 AngⅡ降低延髓神经元总SOD的活性 | 第31-32页 |
| 1.4.2 CBS在延髓神经元的表达 | 第32-33页 |
| 1.4.3 AngⅡ抑制延髓神经元CBS mRNA的表达 | 第33-34页 |
| 2. H2S抑制AngⅡ引起的延髓神经元ROS水平的升高及可能机制 | 第34-40页 |
| 2.1 外源性H_2S抑制AngⅡ引起的延髓神经元ROS水平的升高及可能机制 | 第34-37页 |
| 2.1.1 NaHS单独对延髓神经元ROS水平无明显作用 | 第34-35页 |
| 2.1.2 NaHS抑制AngⅡ引起的ROS水平升高 | 第35-36页 |
| 2.1.3 NaHS抑制AngⅡ引起的总SOD活性降低 | 第36-37页 |
| 2.2 内源性H_2S抑制AngⅡ引起的延髓神经元ROS水平的升高及可能机制 | 第37-40页 |
| 2.2.1 NaBu对延髓神经元ROS水平无显著作用 | 第37-38页 |
| 2.2.2 NaBu抑制AngⅡ引起的延髓神经元ROS水平升高 | 第38-39页 |
| 2.2.3 NaBu抑制AngⅡ引起的总SOD活性降低 | 第39-40页 |
| 小结 | 第40-41页 |
| 第二部分 H_2S抑制AngⅡ引起的延髓神经元钙内流 | 第41-52页 |
| 1. AngⅡ引起延髓神经元钙内流 | 第41-47页 |
| 1.1 大鼠延髓神经元胞内静息钙浓度 | 第41-43页 |
| 1.2 AngⅡ引起延髓神经元胞内钙浓度增加 | 第43-47页 |
| 2. H_2S抑制AngⅡ引起的延髓神经元钙内流 | 第47-51页 |
| 2.1 外源性H_2S抑制AngⅡ引起的延髓神经元钙内流 | 第47-49页 |
| 2.2 内源性H_2S抑制AngⅡ引起的延髓神经元钙内流 | 第49-51页 |
| 3. AngⅡ引起的延髓神经元钙内流的可能机制 | 第51-52页 |
| 3.1 AngⅡ引起的钙内流伴随ROS的增加 | 第51-52页 |
| 小结 | 第52页 |
| 结论 | 第52-53页 |
| 讨论 | 第53-58页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |
| 附录1：在读期间发表的文章与参与的会议 | 第63-64页 |
| 附录2：文献综述 | 第64-73页 |
| 参考文献 | 第70-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
