| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 引言 | 第10-17页 |
| 1. 花色苷研究进展 | 第10-13页 |
| 1.1 花色苷合成途径 | 第10-11页 |
| 1.2 影响花色苷合成的环境因素 | 第11-12页 |
| 1.3 MBW转录激活复合体对花色苷合成的调控 | 第12-13页 |
| 2. MBW转录激活复合体对表皮细胞命运决定及种子粘液形成的调控 | 第13-16页 |
| 2.1 MBW转录激活复合体对表皮毛细胞发生的调控 | 第13-14页 |
| 2.2 MBW转录激活复合体对根毛及下胚轴气孔细胞发生的调控 | 第14-15页 |
| 2.3 MBW转录激活复合体对种子粘液形成的调控 | 第15-16页 |
| 3. GL2对表皮细胞的分化及种子粘液形成的调控 | 第16页 |
| 4. 研究目的和意义 | 第16-17页 |
| 材料与方法 | 第17-35页 |
| 1. 实验材料 | 第17-24页 |
| 1.1 植物材料 | 第17页 |
| 1.2 菌种和质粒 | 第17页 |
| 1.3 试剂和试剂盒 | 第17-19页 |
| 1.4 培养基及缓冲液的配制 | 第19-21页 |
| 1.5 引物设计及合成 | 第21-22页 |
| 1.6 仪器及设备 | 第22-24页 |
| 2. 实验方法 | 第24-35页 |
| 2.1 拟南芥的培养方法 | 第24页 |
| 2.2 种子的消毒及培养 | 第24页 |
| 2.3 植物DNA的提取 | 第24-25页 |
| 2.4 植物RNA的提取及RT-PCR | 第25-26页 |
| 2.5 载体的构建 | 第26-29页 |
| 2.6 根瘤农杆菌感受态细胞的制备与转化 | 第29-30页 |
| 2.7 植物的转化及纯合体的筛选 | 第30页 |
| 2.8 拟南芥杂交 | 第30-31页 |
| 2.9 花色苷的提取及测定 | 第31页 |
| 2.10 染色质免疫共沉淀 | 第31-33页 |
| 2.11 质粒DNA大量提取 | 第33-34页 |
| 2.12 原生质体瞬时转染 | 第34页 |
| 2.13 钌红染色 | 第34-35页 |
| 结果与分析 | 第35-50页 |
| 1. GL2激活标签突变体的获得 | 第35-40页 |
| 1.1 gl2-1D/gpa1-2激活标签突变体的获得 | 第35-36页 |
| 1.2 蔗糖对gl2-1D/gpa1-2幼苗花色苷合成的影响 | 第36-37页 |
| 1.3 pPZP35SE-GL2p:GL2过表达载体的构建及转基因植株的获取 | 第37-40页 |
| 2. gl2突变体花色苷含量升高 | 第40-44页 |
| 2.1 gl2-1D和gl2突变体花色苷含量变化比较 | 第40-42页 |
| 2.2 gl2-1D与gl2突变体表皮毛的表型比较 | 第42页 |
| 2.3 gl2-1D与gl2突变体根毛的表型比较 | 第42-43页 |
| 2.4 gl2-1D与gl2突变体种子粘液的表型比较 | 第43-44页 |
| 3. GL2对花色苷合成相关基因表达的影响 | 第44-48页 |
| 3.1 GL2对早期及晚期花色苷合成基因表达的影响 | 第44-45页 |
| 3.2 GL2抑制MBW转录激活复合体的表达 | 第45-47页 |
| 3.3 GL2能够结合到MYB113、PAP2和TT8基因的启动子序列上 | 第47-48页 |
| 4. GL2抑制报告基因的表达 | 第48-50页 |
| 讨论 | 第50-52页 |
| 1. GL2抑制花色苷的合成 | 第50页 |
| 2. GL2是转录抑制子 | 第50-51页 |
| 3. MYB113、PAP2和TT8是GL2的直接靶基因 | 第51-52页 |
| 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-59页 |
| 附录(缩略语) | 第59-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 在学期间公开发表论文及著作情况 | 第63页 |
