中文摘要 | 第4-8页 |
Abstract | 第8-12页 |
第1章 绪论 | 第17-19页 |
第2章 综述 | 第19-29页 |
2.1 足细胞 | 第19-20页 |
2.1.1 足细胞的结构与功能 | 第19-20页 |
2.2 DYYG化合物 | 第20页 |
2.3 足细胞病及其治疗 | 第20-21页 |
2.3.1 足细胞病 | 第20页 |
2.3.2 足细胞病的治疗 | 第20-21页 |
2.4 PAN肾病模型 | 第21-22页 |
2.5 自噬与肾脏疾病 | 第22-29页 |
2.5.1 自噬的基本概念 | 第22-23页 |
2.5.2 自噬现象的发现 | 第23页 |
2.5.3 自噬发生的基本过程 | 第23页 |
2.5.4 细胞自噬的分类 | 第23-24页 |
2.5.5 自噬的功能 | 第24页 |
2.5.6 自噬的信号转导调控 | 第24-25页 |
2.5.7 自噬与FSGS | 第25页 |
2.5.8 自噬与肾间质纤维化 | 第25-26页 |
2.5.9 自噬与糖尿病肾病 | 第26页 |
2.5.10 自噬与急性肾损伤 | 第26-27页 |
2.5.11 自噬与IgA肾病/特发性膜性肾病 | 第27页 |
2.5.12 自噬与Lupus Nephritis | 第27-29页 |
第3章 DYYG化合物对PAN诱导足细胞凋亡模型的保护作用研究 | 第29-53页 |
3.1 材料与方法 | 第29-39页 |
3.1.1 材料 | 第29-31页 |
3.1.2 实验方法 | 第31-39页 |
3.1.3 统计学分析 | 第39页 |
3.2 结果 | 第39-50页 |
3.2.1 足细胞分化的诱导与鉴定 | 第39-40页 |
3.2.2 流式细胞仪检测PAN诱导足细胞凋亡作用最佳浓度及最佳时间 | 第40-42页 |
3.2.3 RT-PCR检测不同浓度DYYG对PAN诱导足细胞损伤后细胞标志蛋白mRNA表达的影响 | 第42-46页 |
3.2.4 Western blot观察DYYG对PAN诱导足细胞损伤后细胞标志蛋白表达的影响 | 第46-47页 |
3.2.5 免疫荧光观察DYYG对足细胞特异性骨架蛋白Synaptopodin表达的影响 | 第47-48页 |
3.2.6 流式细胞仪检测DYYG抗PAN诱导足细胞凋亡作用 | 第48-50页 |
3.3 讨论 | 第50-51页 |
3.4 结论 | 第51-53页 |
第4章 DYYG化合物对PAN诱导足细胞损伤模型自噬的影响 | 第53-63页 |
4.1 材料与方法 | 第53-55页 |
4.1.1 材料 | 第53页 |
4.1.2 实验方法 | 第53-55页 |
4.1.3 统计学分析 | 第55页 |
4.2 结果 | 第55-61页 |
4.2.1 共聚焦显微镜观察DYYG对mRFP-GFP-LC3腺病毒转染足细胞自噬的影响 | 第55-58页 |
4.2.2 透射电镜观察DYYG对足细胞自噬的影响 | 第58-60页 |
4.2.3 Western blot检测各组足细胞LC3-Ⅱ、Beclin、P62的表达水平 | 第60-61页 |
4.3 讨论 | 第61页 |
4.4 结论 | 第61-63页 |
第5章 DYYG化合物对大鼠PAN肾病的足细胞保护作用 | 第63-75页 |
5.1 材料与方法 | 第63-66页 |
5.1.1 材料 | 第63页 |
5.1.2 实验方法 | 第63-65页 |
5.1.3 统计学分析 | 第65-66页 |
5.2 结果 | 第66-73页 |
5.2.1 DYYG对大鼠体重、24 小时尿量、尿蛋白定量及生化指标的影响 | 第66-68页 |
5.2.2 免疫组化 | 第68-70页 |
5.2.3 免疫荧光 | 第70页 |
5.2.4 透射电镜 | 第70-73页 |
5.3 讨论 | 第73-74页 |
5.4 结论 | 第74-75页 |
第6章 DYYG化合物通过PTEN/AKT/MTOR信号通路诱导足细胞自噬 | 第75-81页 |
6.1 材料与方法 | 第75-76页 |
6.1.1 材料 | 第75页 |
6.1.2 实验方法 | 第75-76页 |
6.1.3 统计学分析 | 第76页 |
6.2 结果 | 第76-78页 |
6.3 讨论 | 第78-79页 |
6.4 结论 | 第79-81页 |
第7章 结论与课题创新性分析 | 第81-83页 |
7.1 结论 | 第81页 |
7.2 课题创新性 | 第81-83页 |
参考文献 | 第83-91页 |
作者介绍及在学期间所取得的科研成果 | 第91-93页 |
致谢 | 第93页 |