| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 引言 | 第10-14页 |
| 1 材料与仪器 | 第14-18页 |
| 1.1 实验动物 | 第14页 |
| 1.2 动物饲料 | 第14页 |
| 1.3 引物序列 | 第14页 |
| 1.4 主要耗材 | 第14-15页 |
| 1.5 主要仪器 | 第15页 |
| 1.6 主要试剂 | 第15-16页 |
| 1.7 溶液配制 | 第16-18页 |
| 2 实验方法 | 第18-23页 |
| 2.1 小鼠基因鉴定 | 第18-19页 |
| 2.1.1 DNA提取 | 第18页 |
| 2.1.2 PCR反应条件 | 第18页 |
| 2.1.3 琼脂糖凝胶电泳 | 第18-19页 |
| 2.2 小鼠葡萄糖耐量实验 | 第19页 |
| 2.3 糖尿病小鼠模型构建 | 第19页 |
| 2.4 小鼠尿蛋白测定 | 第19页 |
| 2.4.1 样品收集 | 第19页 |
| 2.4.2 尿蛋白检测 | 第19页 |
| 2.5 小鼠器官组织和血清收集 | 第19页 |
| 2.6 小鼠肾功能指标Scr、BUN含量检测 | 第19-20页 |
| 2.6.1 Scr含量检测 | 第19-20页 |
| 2.6.2 BUN含量检测 | 第20页 |
| 2.7 气相色谱检测肾脏脂肪酸含量 | 第20页 |
| 2.7.1 样品提取 | 第20页 |
| 2.7.2 分液 | 第20页 |
| 2.7.3 蒸干 | 第20页 |
| 2.7.4 氮吹 | 第20页 |
| 2.7.5 甲酯化 | 第20页 |
| 2.7.6 气相操作 | 第20页 |
| 2.8 LC-MS-MS检测肾脏多不饱和脂肪酸衍生物含量 | 第20-21页 |
| 2.9 小鼠组织目的蛋白表达分析 | 第21-22页 |
| 2.9.1 蛋白提取 | 第21页 |
| 2.9.2 BCA法测定样品中蛋白含量 | 第21页 |
| 2.9.3 分离胶和堆积胶制作 | 第21页 |
| 2.9.4 电泳 | 第21页 |
| 2.9.5 转膜 | 第21页 |
| 2.9.6 封闭 | 第21-22页 |
| 2.9.7 抗体孵育 | 第22页 |
| 2.9.8 条带曝光 | 第22页 |
| 2.10 统计学分析 | 第22-23页 |
| 3 实验结果 | 第23-37页 |
| 3.1 糖尿病小鼠模型建成 | 第23-27页 |
| 3.1.1 基因鉴定结果 | 第23页 |
| 3.1.2 葡萄糖耐量实验 | 第23-24页 |
| 3.1.3 OGTT曲线下面积 | 第24-25页 |
| 3.1.4 随机血糖 | 第25页 |
| 3.1.5 生理学特征 | 第25-27页 |
| 3.2 n-3 PUFAs改善糖尿病肾病损伤 | 第27-34页 |
| 3.2.1 肾脏大体图片 | 第27页 |
| 3.2.2 胰腺组织病理切片 | 第27-28页 |
| 3.2.3 肾脏组织病理切片 | 第28-29页 |
| 3.2.4 体重和脏器系数比 | 第29-30页 |
| 3.2.5 肾功能检测 | 第30-31页 |
| 3.2.6 肾脏脂肪酸含量 | 第31-32页 |
| 3.2.7 肾脏中n-6/n-3 PUFAs比率 | 第32-33页 |
| 3.2.8 肾脏不饱和脂肪酸衍生物含量 | 第33-34页 |
| 3.3 n-3 PUFAs抑制NF-кB/IL-1β 通路 | 第34-37页 |
| 3.3.1 肾脏IL-1β 及表皮-基质转化通路蛋白的表达 | 第34-35页 |
| 3.3.2 肝脏IL-1β 及相关蛋白表达 | 第35-37页 |
| 4 讨论 | 第37-41页 |
| 5 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-48页 |
