| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 前言 | 第11-18页 |
| 1.1 长柄侧耳的研究概况 | 第11页 |
| 1.2 多糖的研究现状 | 第11-12页 |
| 1.3 多糖的提取分离纯化 | 第12-14页 |
| 1.3.1 多糖的提取 | 第12页 |
| 1.3.2 多糖的分离纯化 | 第12页 |
| 1.3.3 多糖纯度的鉴定 | 第12-13页 |
| 1.3.4 多糖结构的研究 | 第13-14页 |
| 1.3.4.1 高效液相色谱法测定绝对分子量 | 第13页 |
| 1.3.4.2 红外光谱(R) | 第13页 |
| 1.3.4.3 单糖组成分析 | 第13-14页 |
| 1.3.4.4 多糖的构象表征 | 第14页 |
| 1.4 多糖的生物活性 | 第14-17页 |
| 1.4.1 抗肿瘤活性 | 第15-16页 |
| 1.4.2 降血糖活性 | 第16页 |
| 1.4.3 抗补体活性 | 第16页 |
| 1.4.4 其他活性 | 第16-17页 |
| 1.5 立题依据及研究内容 | 第17-18页 |
| 第二章 长柄侧耳液体发酵液胞外多糖PSEPS2-A的提取、分离和纯化 | 第18-23页 |
| 2.1 实验部分 | 第18-20页 |
| 2.1.1 主要实验原料、试剂与仪器 | 第18页 |
| 2.1.2 长柄侧耳胞外多糖PSEPS2-A的提取、分离和纯化 | 第18-20页 |
| 2.1.3 PSEPS2-A均一性鉴定 | 第20页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第20-23页 |
| 2.2.1 PSEPS2-A的提取、分离和纯化 | 第20-21页 |
| 2.2.2 PSEPS2-A均一性鉴定 | 第21-23页 |
| 第三章 PSEPS2-A的结构表征 | 第23-32页 |
| 3.1 实验部分 | 第23-26页 |
| 3.1.1 主要实验材料与仪器 | 第23页 |
| 3.1.2 PSEPS2-A的理化性质研究 | 第23-25页 |
| 3.1.2.1 PSEPS2-A的总体性质 | 第23页 |
| 3.1.2.2 PSEPS2-A多糖总含量的测定 | 第23-24页 |
| 3.1.2.3 PSEPS2-A多糖中蛋白质含量的测定 | 第24页 |
| 3.1.2.4 PSEPS2-A元素分析 | 第24页 |
| 3.1.2.5 PSEPS2-A绝对分子量的测定 | 第24-25页 |
| 3.1.2.6 单糖组成分析 | 第25页 |
| 3.1.2.7 PSEPS2-A的刚果红反应 | 第25页 |
| 3.1.3 PSEPS2-A的光谱分析 | 第25-26页 |
| 3.1.3.1 PSEPS2-A的紫外(UV)光谱分析 | 第25-26页 |
| 3.1.3.2 PSEPS2-A的红外(FT-IR)光谱分析 | 第26页 |
| 3.1.3.3 PSEPS2-A的扫描电镜(SEM)分析 | 第26页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第26-32页 |
| 3.2.0 PSEPS2-A的总体性质测定结果 | 第26页 |
| 3.2.1 PSEPS2-A的总糖含量测定结果 | 第26页 |
| 3.2.2 PSEPS2-A蛋白质含量测定 | 第26-27页 |
| 3.2.3 PSEPS2-A的元素分析结果 | 第27页 |
| 3.2.4 PSEPS2-A的绝对分子量测定 | 第27-28页 |
| 3.2.5 PSEPS2-A的单糖组成测定 | 第28-29页 |
| 3.2.6 PSEPS2-A的刚果红反应分析 | 第29-30页 |
| 3.2.7 PSEPS2-A的光谱分析结果 | 第30-32页 |
| 3.2.7.1 PSEPS2-A的紫外(UV)光谱分析结果 | 第30页 |
| 3.2.7.2 PSEPS2-A的红外(FT-IR)光谱分析结果 | 第30-31页 |
| 3.2.7.3 PSEPS2-A的扫描电镜(SEM)分析结果 | 第31-32页 |
| 第四章 PSEPS2-A的抗肿瘤活性研究 | 第32-39页 |
| 4.1 实验部分 | 第32-35页 |
| 4.1.1 主要实验材料与仪器 | 第32页 |
| 4.1.2 PSEPS2-A的体外抗肿瘤实验 | 第32-33页 |
| 4.1.2.1 细胞培养 | 第32页 |
| 4.1.2.2 PSEPS2-A对肿瘤细胞生长抑制实验 | 第32-33页 |
| 4.1.3 PSEPS2-A体内抗肿瘤活性实验 | 第33-35页 |
| 4.1.3.0 实验动物 | 第33页 |
| 4.1.3.1 S180腹水瘤小鼠的制备 | 第33页 |
| 4.1.3.2 PSEPS2-A体内抗肿瘤实验 | 第33页 |
| 4.1.3.3 肿瘤抑制率和脏器指数的测定 | 第33-34页 |
| 4.1.3.4 脾细胞悬浊液的制备 | 第34页 |
| 4.1.3.5 脾淋巴细胞增殖实验 | 第34页 |
| 4.1.3.6 腹腔巨噬细胞吞噬实验 | 第34页 |
| 4.1.3.7 IFN-γ、IL-2、TNF-α的测定 | 第34-35页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第35-39页 |
| 4.2.1 PSEPS2-A的体外抗肿瘤活性结果 | 第35-36页 |
| 4.2.2 PSEPS2-A的体内抗肿瘤活性结果 | 第36-39页 |
| 4.2.2.1 PSEPS2-A的肿瘤抑制率和脏器指数的测定 | 第36-37页 |
| 4.2.2.2 PSEPS2-A的脾淋巴细胞增殖实验 | 第37页 |
| 4.2.2.3 PSEPS2-A的腹腔巨噬细胞吞噬实验 | 第37-38页 |
| 4.2.2.4 PSEPS2-A的IFN-γ、IL-2、TNF-α测定 | 第38-39页 |
| 第五章 PSEPS2-A的降血糖活性研究 | 第39-44页 |
| 5.1 实验部分 | 第39-40页 |
| 5.1.1 主要实验材料与仪器 | 第39页 |
| 5.1.2 糖尿病小鼠模型构建及实验设计 | 第39页 |
| 5.1.3 小鼠基本生活状况观察 | 第39页 |
| 5.1.4 PSEPS2-A对糖尿病小鼠血糖值的影响 | 第39-40页 |
| 5.1.5 脏器指数的测定 | 第40页 |
| 5.1.6 肝糖原含量测定 | 第40页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第40-44页 |
| 5.2.1 小鼠基本生活状况观察 | 第40页 |
| 5.2.2 PSEPS2-A对糖尿病小鼠空腹血糖值的影响 | 第40-41页 |
| 5.2.3 PSEPS2-A对糖尿病小鼠糖耐量的影响 | 第41页 |
| 5.2.4 PSEPS2-A对糖尿病小鼠体质量的影响 | 第41-42页 |
| 5.2.5 PSEPS2-A对糖尿病小鼠脏器指数的影响 | 第42-43页 |
| 5.2.6 PSEPS2-A对糖尿病小鼠肝糖原水平的影响 | 第43-44页 |
| 第六章 PSEPS2-A体外抗补体活性研究 | 第44-47页 |
| 6.1 实验部分 | 第44-45页 |
| 6.1.1 主要实验材料与仪器 | 第44页 |
| 6.1.2 实验方法 | 第44-45页 |
| 6.1.2.1 溶液配制 | 第44页 |
| 6.1.2.2 临界补体浓度的测定 | 第44-45页 |
| 6.1.2.3 PSEPS2-A抗补体活性的测定 | 第45页 |
| 6.2 结果及讨论 | 第45-47页 |
| 6.2.1 补体效价测定结果 | 第45-46页 |
| 6.2.2 抗补体测定结果 | 第46-47页 |
| 第七章 结论和展望 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 硕士期间主要工作 | 第52-53页 |
| 发表论文 | 第52页 |
| 科研项目 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
